
Un potencial de acción (también conocido como impulso nervioso o " espiga " en una neurona ) es una serie de cambios rápidos de voltaje a través de la membrana celular. Un potencial de acción ocurre cuando el potencial de membrana de una célula específica aumenta y disminuye rápidamente. [ 1 ] Esta " despolarización " (físicamente, una inversión de la polarización de la membrana) provoca que las zonas adyacentes se despolaricen de manera similar. Los potenciales de acción ocurren en varios tipos de células excitables , que incluyen células animales como neuronas y células musculares , así como algunas células vegetales . Ciertas células endocrinas , como las células beta pancreáticas , y ciertas células de la hipófisis anterior también son células excitables. [ 2 ]
En las neuronas, los potenciales de acción desempeñan un papel central en la comunicación intercelular al facilitar —o, en el caso de la conducción saltatoria , ayudar— la propagación de señales a lo largo del axón de la neurona hacia los botones sinápticos situados en los extremos del axón; estas señales pueden luego conectarse con otras neuronas en las sinapsis, o con células motoras o glándulas. En otros tipos de células, su función principal es activar procesos intracelulares. En las células musculares, por ejemplo, un potencial de acción es el primer paso en la cadena de eventos que conducen a la contracción. En las células beta del páncreas , provocan la liberación de insulina . [ a ] La secuencia temporal de potenciales de acción generados por una neurona se denomina "tren de espigas". Una neurona que emite un potencial de acción, o impulso nervioso, se suele denominar "dispara".
Los potenciales de acción son generados por tipos especiales de canales iónicos dependientes de voltaje incrustados en la membrana plasmática de la célula . Estos canales se cierran cuando el potencial de membrana se aproxima al potencial de reposo (negativo) de la célula, pero se abren rápidamente si el potencial de membrana aumenta hasta un voltaje umbral precisamente definido, despolarizando la membrana. Cuando los canales se abren, permiten un flujo de iones de sodio hacia el interior , lo que hace que el interior de la célula sea más positivo, elevando aún más el potencial de membrana (negativo). Esto provoca que se abran más canales, produciendo una mayor corriente eléctrica a través de la membrana celular, y así sucesivamente. El proceso se desarrolla de forma explosiva hasta que todos los canales iónicos disponibles se abren, lo que resulta en un gran aumento del potencial de membrana. El rápido influjo de iones de sodio provoca que la polaridad (es decir, la dirección del campo eléctrico a través de) la membrana plasmática se invierta, y los canales iónicos se inactivan rápidamente. A medida que los canales de sodio se cierran, los iones de sodio ya no pueden entrar en la neurona y son transportados activamente de vuelta fuera de la membrana plasmática. Los canales de potasio se activan y se produce una corriente de iones de potasio hacia el exterior, lo que restablece el gradiente electroquímico al estado de reposo. Dado que se necesita el paso de pocos iones para modificar el potencial, las concentraciones de iones a ambos lados permanecen relativamente constantes durante este proceso. Tras la generación de un potencial de acción, se produce un desplazamiento negativo transitorio, denominado hiperpolarización posterior .
En las células animales, existen dos tipos principales de potenciales de acción. Un tipo es generado por canales de sodio dependientes de voltaje , y el otro por canales de calcio dependientes de voltaje . Los potenciales de acción basados en sodio generalmente duran menos de un milisegundo, pero los potenciales de acción basados en calcio pueden durar 100 milisegundos o más. [ c ] En algunos tipos de neuronas, los picos lentos de calcio proporcionan la fuerza impulsora para una larga ráfaga de picos de sodio emitidos rápidamente. En las células del músculo cardíaco , por otro lado, un pico rápido inicial de sodio proporciona un "cebador" para provocar el inicio rápido de un pico de calcio, que luego produce la contracción muscular. [ 3 ] [ c ]
Descripción general

Casi todas las membranas celulares de animales, plantas y hongos mantienen una diferencia de potencial eléctrico entre el exterior y el interior de la célula, denominada potencial de membrana . Un potencial típico a través de la membrana de una célula animal es de -70 mV. Esto significa que el interior de la célula tiene un potencial negativo con respecto al exterior. En la mayoría de los tipos de células, el potencial de membrana suele permanecer bastante constante. Sin embargo, algunos tipos de células son eléctricamente activas, en el sentido de que sus potenciales eléctricos fluctúan con el tiempo. En algunos tipos de células eléctricamente activas, como las neuronas y las células musculares, las fluctuaciones de potencial eléctrico suelen adoptar la forma de un rápido pico ascendente (positivo) seguido de una rápida caída. Estos ciclos ascendentes y descendentes se conocen como potenciales de acción . Su duración varía considerablemente según el tipo de célula. En las neuronas de mamíferos, el ciclo ascendente y descendente completo dura solo unas pocas milésimas de segundo, [ 4 ] mientras que en las células vegetales , un potencial de acción puede durar varios segundos. [ 5 ]
Las propiedades eléctricas de una célula están determinadas por la estructura de su membrana. La membrana celular consta de una bicapa lipídica formada por moléculas en las que se insertan moléculas proteicas de mayor tamaño. Esta bicapa lipídica es altamente resistente al movimiento de iones con carga eléctrica, por lo que funciona como aislante. En cambio, las proteínas de gran tamaño insertadas en la membrana forman canales a través de los cuales los iones pueden atravesarla. Los potenciales de acción son generados por proteínas de canal cuya configuración alterna entre estados cerrados y abiertos en función de la diferencia de potencial entre el interior y el exterior de la célula. Estas proteínas sensibles al voltaje se conocen como canales iónicos dependientes de voltaje .
Proceso en una neurona típica

Todas las células de los tejidos corporales animales están polarizadas eléctricamente ; es decir, mantienen una diferencia de voltaje a través de la membrana plasmática celular , conocida como potencial de membrana . Esta polarización eléctrica resulta de una compleja interacción entre estructuras proteicas incrustadas en la membrana, llamadas bombas iónicas y canales iónicos . En las neuronas, los tipos de canales iónicos en la membrana suelen variar en las diferentes partes de la célula, lo que confiere a las dendritas , el axón y el cuerpo celular propiedades eléctricas distintas. Como resultado, algunas partes de la membrana de una neurona pueden ser excitables (capaces de generar potenciales de acción), mientras que otras no. Estudios recientes han demostrado que la parte más excitable de una neurona es la que se encuentra después del cono axónico (el punto donde el axón abandona el cuerpo celular), denominada segmento inicial axonal , aunque el axón y el cuerpo celular también son excitables en la mayoría de los casos. [ 6 ]
Cada segmento excitable de la membrana tiene dos niveles importantes de potencial de membrana: el potencial de reposo , que es el valor que mantiene mientras nada perturba la célula, y un valor más alto llamado potencial umbral . En el cono axónico de una neurona típica, el potencial de reposo es de alrededor de -70 milivoltios (mV) y el potencial umbral es de alrededor de -55 mV. Las entradas sinápticas a una neurona provocan la despolarización o hiperpolarización de la membrana ; es decir, provocan que el potencial de membrana aumente o disminuya. Los potenciales de acción se desencadenan cuando se acumula suficiente despolarización para elevar el potencial de membrana hasta el umbral. Cuando se desencadena un potencial de acción, el potencial de membrana aumenta bruscamente y luego disminuye bruscamente, a menudo terminando por debajo del nivel de reposo, donde permanece durante un cierto período de tiempo. La forma del potencial de acción es estereotipada; esto significa que el aumento y la disminución generalmente tienen aproximadamente la misma amplitud y duración para todos los potenciales de acción en una célula dada. (Las excepciones se analizan más adelante en el artículo). En la mayoría de las neuronas, todo el proceso se desarrolla en aproximadamente una milésima de segundo. Muchos tipos de neuronas emiten potenciales de acción constantemente a una frecuencia de hasta 10 a 100 por segundo. Sin embargo, algunos tipos son mucho más silenciosos y pueden pasar minutos o más tiempo sin emitir ningún potencial de acción.
Base biofísica
Los potenciales de acción resultan de la presencia en la membrana celular de tipos especiales de canales iónicos dependientes de voltaje . [ 7 ] Un canal iónico dependiente de voltaje es una proteína transmembrana que tiene tres propiedades clave:
- Es capaz de adoptar más de una conformación.
- Al menos una de las conformaciones crea un canal a través de la membrana que es permeable a tipos específicos de iones.
- La transición entre conformaciones está influenciada por el potencial de membrana.
Así, un canal iónico dependiente del voltaje tiende a estar abierto para ciertos valores del potencial de membrana y cerrado para otros. Sin embargo, en la mayoría de los casos, la relación entre el potencial de membrana y el estado del canal es probabilística e implica un retardo temporal. Los canales iónicos cambian de conformación en momentos impredecibles: el potencial de membrana determina la frecuencia de las transiciones y la probabilidad por unidad de tiempo de cada tipo de transición.

Los canales iónicos dependientes de voltaje son capaces de producir potenciales de acción porque pueden generar bucles de retroalimentación positiva : el potencial de membrana controla el estado de los canales iónicos, y el estado de los canales iónicos controla el potencial de membrana. Así, en algunas situaciones, un aumento del potencial de membrana puede provocar la apertura de los canales iónicos, causando a su vez un aumento adicional del potencial de membrana. Un potencial de acción se produce cuando este ciclo de retroalimentación positiva se desarrolla de forma explosiva. La trayectoria temporal y de amplitud del potencial de acción está determinada por las propiedades biofísicas de los canales iónicos dependientes de voltaje que lo producen. Existen varios tipos de canales capaces de producir la retroalimentación positiva necesaria para generar un potencial de acción. Los canales de sodio dependientes de voltaje son responsables de los potenciales de acción rápidos implicados en la conducción nerviosa. Los potenciales de acción más lentos en las células musculares y algunos tipos de neuronas son generados por canales de calcio dependientes de voltaje. Cada uno de estos tipos presenta múltiples variantes, con diferente sensibilidad al voltaje y diferente dinámica temporal.
El tipo de canales iónicos dependientes de voltaje más estudiado son los canales de sodio implicados en la conducción nerviosa rápida. A veces se les conoce como canales de sodio de Hodgkin-Huxley, ya que fueron caracterizados por primera vez por Alan Hodgkin y Andrew Huxley en sus estudios sobre la biofísica del potencial de acción, galardonados con el Premio Nobel, pero se les puede denominar más convenientemente canales Na V. (La "V" significa "voltaje"). Un canal Na V tiene tres estados posibles: desactivado , activado e inactivado . El canal es permeable únicamente a los iones de sodio cuando se encuentra en el estado activado . Cuando el potencial de membrana es bajo, el canal permanece la mayor parte del tiempo en el estado desactivado (cerrado). Si el potencial de membrana se eleva por encima de cierto nivel, el canal muestra una mayor probabilidad de pasar al estado activado (abierto). Cuanto mayor sea el potencial de membrana, mayor será la probabilidad de activación. Una vez activado, el canal pasará finalmente al estado inactivado (cerrado). Tiende entonces a permanecer inactivado durante un tiempo, pero, si el potencial de membrana vuelve a ser bajo, el canal eventualmente volverá al estado desactivado . Durante un potencial de acción, la mayoría de los canales de este tipo pasan por un ciclo desactivado → activado → inactivado → desactivado . Sin embargo, este es solo el comportamiento promedio de la población; un canal individual puede, en principio, realizar cualquier transición en cualquier momento. No obstante, la probabilidad de que un canal transite directamente del estado inactivado al estado activado es muy baja: un canal en estado inactivado es refractario hasta que haya vuelto al estado desactivado .
Como resultado, la cinética de los canales Na V se rige por una matriz de transición cuyas tasas dependen del voltaje de forma compleja. Dado que estos canales desempeñan un papel fundamental en la determinación del voltaje, la dinámica global del sistema puede ser bastante difícil de comprender. Hodgkin y Huxley abordaron el problema desarrollando un conjunto de ecuaciones diferenciales para los parámetros que rigen los estados de los canales iónicos, conocidas como las ecuaciones de Hodgkin-Huxley . Estas ecuaciones han sido ampliamente modificadas por investigaciones posteriores, pero constituyen el punto de partida de la mayoría de los estudios teóricos sobre la biofísica del potencial de acción.

A medida que aumenta el potencial de membrana, se abren los canales de iones de sodio , permitiendo la entrada de iones de sodio a la célula. A esto le sigue la apertura de los canales de iones de potasio que permiten la salida de iones de potasio de la célula. El flujo de entrada de iones de sodio aumenta la concentración de cationes con carga positiva en la célula y causa despolarización, donde el potencial de la célula es mayor que el potencial de reposo de la célula . Los canales de sodio se cierran en el pico del potencial de acción, mientras que el potasio continúa saliendo de la célula. El eflujo de iones de potasio disminuye el potencial de membrana o hiperpolariza la célula. Para pequeños aumentos de voltaje desde el reposo, la corriente de potasio supera la corriente de sodio y el voltaje regresa a su valor de reposo normal, típicamente −70 mV. [ 8 ] [ 9 ] [ 10 ] Sin embargo, si el voltaje aumenta más allá de un umbral crítico, típicamente 15 mV más alto que el valor de reposo, la corriente de sodio predomina. Esto resulta en una condición de fuga en la que la retroalimentación positiva de la corriente de sodio activa aún más canales de sodio. Así, la célula se dispara , produciendo un potencial de acción. [ 8 ] [ 11 ] [ 12 ] [ nota 1 ] La frecuencia con la que una neurona genera potenciales de acción se suele denominar tasa de disparo o tasa de disparo neuronal .
Las corrientes producidas por la apertura de canales dependientes de voltaje durante un potencial de acción suelen ser significativamente mayores que la corriente estimulante inicial. Por lo tanto, la amplitud, la duración y la forma del potencial de acción están determinadas principalmente por las propiedades de la membrana excitable y no por la amplitud o la duración del estímulo. Esta propiedad de todo o nada del potencial de acción lo distingue de los potenciales graduados , como los potenciales de receptor , los potenciales electrotónicos , las oscilaciones del potencial de membrana subumbral y los potenciales sinápticos , que varían con la magnitud del estímulo. Existen diversos tipos de potenciales de acción en muchos tipos de células y compartimentos celulares, determinados por los tipos de canales dependientes de voltaje, canales de fuga , distribuciones de canales, concentraciones iónicas, capacitancia de membrana, temperatura y otros factores.
Los iones principales que intervienen en un potencial de acción son los cationes de sodio y potasio; los iones de sodio entran en la célula y los de potasio salen, restableciendo el equilibrio. Se necesitan relativamente pocos iones para que el voltaje de la membrana cambie drásticamente. Por lo tanto, los iones intercambiados durante un potencial de acción producen un cambio insignificante en las concentraciones iónicas internas y externas. Los pocos iones que sí cruzan la membrana son bombeados de nuevo hacia fuera por la acción continua de la bomba de sodio-potasio , que, junto con otros transportadores de iones , mantiene la proporción normal de concentraciones iónicas a través de la membrana. Los cationes de calcio y los aniones de cloruro intervienen en algunos tipos de potenciales de acción, como el potencial de acción cardíaco y el potencial de acción en el alga unicelular Acetabularia , respectivamente.
Aunque los potenciales de acción se generan localmente en parches de membrana excitable, las corrientes resultantes pueden desencadenar potenciales de acción en tramos de membrana vecinos, precipitando una propagación tipo dominó. A diferencia de la propagación pasiva de potenciales eléctricos ( potencial electrotónico ), los potenciales de acción se generan de nuevo a lo largo de tramos de membrana excitables y se propagan sin decaimiento. [ 13 ] Las secciones mielinizadas de los axones no son excitables y no producen potenciales de acción y la señal se propaga pasivamente como potencial electrotónico . Parches no mielinizados espaciados regularmente, llamados nodos de Ranvier , generan potenciales de acción para aumentar la señal. Conocida como conducción saltatoria , este tipo de propagación de la señal proporciona un equilibrio favorable entre la velocidad de la señal y el diámetro del axón. La despolarización de las terminales axónicas , en general, desencadena la liberación de neurotransmisor en la hendidura sináptica . Además, se han registrado potenciales de acción retropropagantes en las dendritas de las neuronas piramidales , que son omnipresentes en la neocorteza . [ d ] Se cree que estos tienen un papel en la plasticidad dependiente del tiempo de los picos .
En el modelo de capacitancia de membrana de Hodgkin-Huxley , la velocidad de transmisión de un potencial de acción no estaba definida y se asumía que las áreas adyacentes se despolarizaban debido a la interferencia de iones liberados con los canales vecinos. Mediciones posteriores de difusión y radios iónicos han demostrado que esto no es posible. Además, mediciones contradictorias de cambios de entropía y sincronización cuestionaron el modelo de capacitancia como único mecanismo aplicable. Por otro lado, la hipótesis de adsorción de Gilbert Ling postula que el potencial de membrana y el potencial de acción de una célula viva se deben a la adsorción de iones móviles en los sitios de adsorción de las células. [ 14 ]
Maduración de las propiedades eléctricas del potencial de acción
La capacidad de una neurona para generar y propagar un potencial de acción cambia durante el desarrollo . La magnitud del cambio en el potencial de membrana de una neurona como resultado de un impulso de corriente depende de la resistencia de entrada de la membrana . A medida que una célula crece, se añaden más canales a la membrana, lo que provoca una disminución de la resistencia de entrada. Una neurona madura también experimenta cambios más cortos en el potencial de membrana en respuesta a las corrientes sinápticas. Las neuronas del núcleo geniculado lateral de un hurón tienen una constante de tiempo más larga y una mayor deflexión de voltaje en P0 que en P30. [ 15 ] Una consecuencia de la disminución de la duración del potencial de acción es que la fidelidad de la señal se puede preservar en respuesta a la estimulación de alta frecuencia. Las neuronas inmaduras son más propensas a la depresión sináptica que a la potenciación después de la estimulación de alta frecuencia. [ 15 ]
En el desarrollo temprano de muchos organismos, el potencial de acción es transportado inicialmente por la corriente de calcio en lugar de la corriente de sodio . La cinética de apertura y cierre de los canales de calcio durante el desarrollo es más lenta que la de los canales de sodio dependientes de voltaje que transportarán el potencial de acción en las neuronas maduras. Los tiempos de apertura más prolongados de los canales de calcio pueden dar lugar a potenciales de acción considerablemente más lentos que los de las neuronas maduras. [ 15 ] Las neuronas de Xenopus inicialmente tienen potenciales de acción que duran entre 60 y 90 ms. Durante el desarrollo, este tiempo disminuye a 1 ms. Hay dos razones para esta drástica disminución. Primero, la corriente de entrada pasa a ser transportada principalmente por los canales de sodio. [ 16 ] Segundo, el rectificador retardado , una corriente del canal de potasio , aumenta a 3,5 veces su fuerza inicial. [ 15 ]
Para que se produzca la transición de un potencial de acción dependiente de calcio a uno dependiente de sodio, deben añadirse nuevos canales a la membrana. Si las neuronas de Xenopus se cultivan en un entorno con inhibidores de la síntesis de ARN o de proteínas , dicha transición se impide. [ 17 ] Incluso la actividad eléctrica de la propia célula puede influir en la expresión de los canales. Si se bloquean los potenciales de acción en los miocitos de Xenopus , se impide o retrasa el aumento típico de la densidad de corriente de sodio y potasio. [ 18 ]
Esta maduración de las propiedades eléctricas se observa en diversas especies. Las corrientes de sodio y potasio de Xenopus aumentan drásticamente después de que una neurona atraviesa su fase final de mitosis . La densidad de corriente de sodio de las neuronas corticales de rata aumenta un 600 % durante las dos primeras semanas posnatales. [ 15 ]
Neurotransmisión
Anatomía de una neurona
Diversos tipos de células generan un potencial de acción, como las células vegetales, las células musculares y las células especializadas del corazón (donde se produce el potencial de acción cardíaco ). Sin embargo, la principal célula excitable es la neurona , que además posee el mecanismo más sencillo para generar el potencial de acción.
Las neuronas son células eléctricamente excitables compuestas, en general, por una o más dendritas, un soma , un axón y una o más terminales axónicas . Las dendritas son proyecciones celulares cuya función principal es recibir señales sinápticas. Sus prolongaciones, conocidas como espinas dendríticas , están diseñadas para capturar los neurotransmisores liberados por la neurona presináptica. Poseen una alta concentración de canales iónicos regulados por ligando . Estas espinas tienen un cuello delgado que conecta una prolongación bulbosa con la dendrita. Esto garantiza que los cambios que ocurren dentro de la espina tengan menos probabilidades de afectar a las espinas vecinas. La espina dendrítica puede, con raras excepciones (véase LTP ), actuar como una unidad independiente. Las dendritas se extienden desde el soma, que alberga el núcleo y muchos de los orgánulos eucariotas "normales" . A diferencia de las espinas, la superficie del soma está poblada por canales iónicos activados por voltaje. Estos canales ayudan a transmitir las señales generadas por las dendritas. El cono axónico emerge del soma . Esta región se caracteriza por tener una concentración muy alta de canales de sodio activados por voltaje. En general, se considera la zona de iniciación de los potenciales de acción, [ 19 ] es decir, la zona de activación . Múltiples señales generadas en las espinas y transmitidas por el soma convergen aquí. Inmediatamente después del cono axónico se encuentra el axón. Este es una delgada protrusión tubular que se aleja del soma. El axón está aislado por una vaina de mielina . La mielina está compuesta por células de Schwann (en el sistema nervioso periférico) u oligodendrocitos (en el sistema nervioso central), ambos tipos de células gliales . Aunque las células gliales no participan en la transmisión de señales eléctricas, se comunican y proporcionan un importante soporte bioquímico a las neuronas. [ 20 ] Específicamente, la mielina envuelve varias veces el segmento axonal, formando una gruesa capa grasa que impide que los iones entren o salgan del axón. Este aislamiento previene una atenuación significativa de la señal y, además, garantiza una mayor velocidad de transmisión. Sin embargo, este aislamiento tiene la limitación de que no puede haber canales iónicos en la superficie del axón. Por lo tanto, existen parches de membrana espaciados regularmente que carecen de aislamiento. Estos nódulos de Ranvier pueden considerarse "mini conos axónicos", ya que su función es amplificar la señal para evitar una atenuación significativa. En el extremo más alejado, el axón pierde su aislamiento y comienza a ramificarse en varias terminales axónicas.Estos terminales presinápticos, o botones sinápticos, son un área especializada dentro del axón de la célula presináptica que contiene neurotransmisores encerrados en pequeñas esferas rodeadas de membrana llamadas vesículas sinápticas .
Iniciación
Antes de considerar la propagación de potenciales de acción a lo largo de los axones y su terminación en los botones sinápticos, es útil considerar los métodos por los cuales los potenciales de acción pueden iniciarse en el cono axónico . El requisito básico es que el voltaje de membrana en el cono se eleve por encima del umbral de disparo. [ 8 ] [ 9 ] [ 21 ] [ 22 ] Hay varias formas en que puede ocurrir esta despolarización.

Dinámica
Los potenciales de acción se inician con mayor frecuencia mediante potenciales postsinápticos excitatorios de una neurona presináptica. [ 23 ] Normalmente, la neurona presináptica libera moléculas de neurotransmisores . Estos neurotransmisores se unen a receptores en la célula postsináptica. Esta unión abre diversos tipos de canales iónicos . Esta apertura tiene el efecto adicional de cambiar la permeabilidad local de la membrana celular y, por lo tanto, el potencial de membrana. Si la unión aumenta el voltaje (despolariza la membrana), la sinapsis es excitatoria. Sin embargo, si la unión disminuye el voltaje (hiperpolariza la membrana), es inhibitoria. Ya sea que el voltaje aumente o disminuya, el cambio se propaga pasivamente a regiones cercanas de la membrana (como se describe en la ecuación del cable y sus refinamientos). Normalmente, el estímulo de voltaje decae exponencialmente con la distancia a la sinapsis y con el tiempo transcurrido desde la unión del neurotransmisor. Una fracción del voltaje excitatorio puede llegar al cono axónico y , en raras ocasiones, despolarizar la membrana lo suficiente como para generar un nuevo potencial de acción. Lo más habitual es que los potenciales excitatorios de varias sinapsis actúen simultáneamente para generar un nuevo potencial de acción. Sin embargo, estos esfuerzos conjuntos pueden verse contrarrestados por los potenciales postsinápticos inhibitorios .
La neurotransmisión también puede ocurrir a través de sinapsis eléctricas . [ 24 ] Debido a la conexión directa entre células excitables en forma de uniones comunicantes , un potencial de acción puede transmitirse directamente de una célula a otra en cualquier dirección. El libre flujo de iones entre las células permite una transmisión rápida no mediada químicamente. Los canales rectificadores aseguran que los potenciales de acción se muevan solo en una dirección a través de una sinapsis eléctrica. Las sinapsis eléctricas se encuentran en todos los sistemas nerviosos, incluido el cerebro humano, aunque constituyen una minoría. [ 25 ]
Principio de "todo o nada"
Se suele pensar que la amplitud de un potencial de acción es independiente de la cantidad de corriente que lo produjo. En otras palabras, corrientes mayores no crean potenciales de acción mayores. Por lo tanto, se dice que los potenciales de acción son señales de todo o nada , ya que o ocurren completamente o no ocurren en absoluto. [ e ] [ f ] [ g ] Esto contrasta con los potenciales de receptor , cuyas amplitudes dependen de la intensidad de un estímulo. [ 26 ] En ambos casos, la frecuencia de los potenciales de acción está correlacionada con la intensidad de un estímulo.
A pesar de que la visión clásica del potencial de acción como una señal estereotipada y uniforme ha dominado el campo de la neurociencia durante muchas décadas, nuevas evidencias sugieren que los potenciales de acción son eventos más complejos, capaces de transmitir información no solo a través de su amplitud, sino también de su duración y fase, a veces incluso a distancias que originalmente no se creían posibles. [ 27 ] [ 28 ] [ 29 ] [ 30 ]
Neuronas sensoriales
En las neuronas sensoriales , una señal externa como la presión, la temperatura, la luz o el sonido se acopla con la apertura y el cierre de canales iónicos , que a su vez alteran la permeabilidad iónica de la membrana y su voltaje. [ 31 ] Estos cambios de voltaje pueden ser excitatorios (despolarizantes) o inhibitorios (hiperpolarizantes) y, en algunas neuronas sensoriales, sus efectos combinados pueden despolarizar el cono axónico lo suficiente como para provocar potenciales de acción. Algunos ejemplos en humanos incluyen la neurona receptora olfativa y el corpúsculo de Meissner , que son fundamentales para el sentido del olfato y del tacto , respectivamente. Sin embargo, no todas las neuronas sensoriales convierten sus señales externas en potenciales de acción; algunas ni siquiera tienen axón. [ 32 ] En cambio, pueden convertir la señal en la liberación de un neurotransmisor o en potenciales graduados continuos , cualquiera de los cuales puede estimular a la(s) neurona(s) subsiguiente(s) para que generen un potencial de acción. A modo de ejemplo, en el oído humano , las células ciliadas convierten el sonido entrante en la apertura y el cierre de canales iónicos regulados mecánicamente , lo que puede provocar la liberación de moléculas neurotransmisoras . De manera similar, en la retina humana, las células fotorreceptoras iniciales y la siguiente capa de células (que comprende células bipolares y células horizontales ) no producen potenciales de acción; solo algunas células amacrinas y la tercera capa, las células ganglionares , producen potenciales de acción, que luego viajan a través del nervio óptico .
Potenciales de marcapasos

En las neuronas sensoriales, los potenciales de acción resultan de un estímulo externo. Sin embargo, algunas células excitables no requieren tal estímulo para disparar: despolarizan espontáneamente su cono axónico y disparan potenciales de acción a un ritmo regular, como un reloj interno. [ 33 ] Los trazados de voltaje de dichas células se conocen como potenciales de marcapasos . [ 34 ] Las células marcapasos cardíacas del nodo sinoauricular en el corazón proporcionan un buen ejemplo. [ h ] Aunque estos potenciales de marcapasos tienen un ritmo natural , puede ajustarse mediante estímulos externos; por ejemplo, la frecuencia cardíaca puede alterarse mediante fármacos, así como señales de los nervios simpáticos y parasimpáticos . [ 35 ] Los estímulos externos no causan el disparo repetitivo de la célula, sino que simplemente alteran su sincronización. [ 34 ] En algunos casos, la regulación de la frecuencia puede ser más compleja, dando lugar a patrones de potenciales de acción, como las ráfagas .
Fases
El curso del potencial de acción se puede dividir en cinco partes: la fase ascendente, la fase pico, la fase descendente, la fase de hipopolarización y el período refractario. Durante la fase ascendente, el potencial de membrana se despolariza (se vuelve más positivo). El punto en el que cesa la despolarización se llama fase pico. En esta etapa, el potencial de membrana alcanza un máximo. Posteriormente, se produce una fase descendente. Durante esta etapa, el potencial de membrana se vuelve más negativo, volviendo al potencial de reposo. La fase de hipopolarización, o posthiperpolarización , es el período durante el cual el potencial de membrana se carga temporalmente más negativamente que en reposo (hiperpolarizado). Finalmente, el tiempo durante el cual es imposible o difícil generar un potencial de acción posterior se llama período refractario , que puede superponerse con las otras fases. [ 36 ]
El curso del potencial de acción está determinado por dos efectos acoplados. [ 37 ] Primero, los canales iónicos sensibles al voltaje se abren y cierran en respuesta a cambios en el voltaje de membrana V m . Esto cambia la permeabilidad de la membrana a esos iones. [ 38 ] Segundo, según la ecuación de Goldman , este cambio en la permeabilidad cambia el potencial de equilibrio E m , y, por lo tanto, el voltaje de membrana V m . [ i ] Así, el potencial de membrana afecta la permeabilidad, que luego afecta aún más el potencial de membrana. Esto establece la posibilidad de retroalimentación positiva , que es una parte clave de la fase ascendente del potencial de acción. [ 8 ] [ 11 ] Un factor que complica es que un solo canal iónico puede tener múltiples "compuertas" internas que responden a cambios en V m de maneras opuestas, o a diferentes velocidades. [ 39 ] [ j ] Por ejemplo, aunque aumentar V m abre la mayoría de las compuertas en el canal de sodio sensible al voltaje, también cierra la "compuerta de inactivación" del canal, aunque más lentamente. [ 40 ] Por lo tanto, cuando V m aumenta repentinamente, los canales de sodio se abren inicialmente, pero luego se cierran debido a la inactivación más lenta.
Los voltajes y corrientes del potencial de acción en todas sus fases fueron modelados con precisión por Alan Lloyd Hodgkin y Andrew Huxley en 1952, [ j ] por lo que recibieron el Premio Nobel de Fisiología o Medicina en 1963. [ β ] Sin embargo, su modelo considera solo dos tipos de canales iónicos sensibles al voltaje y hace varias suposiciones sobre ellos, por ejemplo, que sus compuertas internas se abren y cierran independientemente unas de otras. En realidad, hay muchos tipos de canales iónicos, [ 41 ] y no siempre se abren y cierran independientemente. [ k ]
Fase de estimulación y ascenso
Un potencial de acción típico comienza en el cono axónico [ 42 ] con una despolarización suficientemente fuerte, por ejemplo, un estímulo que aumenta V m . Esta despolarización suele ser causada por la inyección de cationes de sodio adicionales en la célula; estos cationes pueden provenir de una amplia variedad de fuentes, como sinapsis químicas , neuronas sensoriales o potenciales marcapasos .
En una neurona en reposo, la concentración de iones sodio y cloruro en el líquido extracelular es mayor que en el líquido intracelular , mientras que la concentración de iones potasio en el líquido intracelular es mayor que en el líquido extracelular. La diferencia de concentraciones, que provoca el movimiento de iones de una zona de alta concentración a una de baja concentración , y los efectos electrostáticos (atracción de cargas opuestas) son responsables del movimiento de iones dentro y fuera de la neurona. El interior de la neurona tiene una carga negativa, en relación con el exterior celular, debido a la salida de iones K + de la célula. La membrana neuronal es más permeable a los iones K + que a otros iones, lo que permite que estos iones salgan selectivamente de la célula, siguiendo su gradiente de concentración. Este gradiente de concentración, junto con los canales de fuga de potasio presentes en la membrana neuronal, provoca una salida de iones potasio, lo que hace que el potencial de reposo se aproxime a E K ≈ −75 mV. [ 43 ] Dado que los iones Na + están en concentraciones más altas fuera de la célula, las diferencias de concentración y voltaje los impulsan hacia el interior de la célula cuando se abren los canales de Na + . La despolarización abre los canales de sodio y potasio en la membrana, permitiendo que los iones fluyan hacia dentro y hacia fuera del axón, respectivamente. Si la despolarización es pequeña (por ejemplo, aumentar V m de −70 mV a −60 mV), la corriente de potasio hacia afuera supera la corriente de sodio hacia adentro y la membrana se repolariza de nuevo a su potencial de reposo normal alrededor de −70 mV. [ 8 ] [ 9 ] [ 10 ] Sin embargo, si la despolarización es lo suficientemente grande, la corriente de sodio hacia adentro aumenta más que la corriente de potasio hacia afuera y se produce una condición de fuga ( retroalimentación positiva ): cuanto más corriente hacia adentro hay, más aumenta V m , lo que a su vez aumenta aún más la corriente hacia adentro. [ 8 ] [ 11 ] Una despolarización suficientemente fuerte (aumento en V m ) provoca la apertura de los canales de sodio sensibles al voltaje; la creciente permeabilidad al sodio acerca V m al voltaje de equilibrio del sodio E Na ≈ +55 mV. El aumento del voltaje a su vez provoca la apertura de aún más canales de sodio, lo que empuja V m aún más hacia ENa . Esta retroalimentación positiva continúa hasta que los canales de sodio se abren completamente y V m se acerca a E Na . [ 8 ] [ 9 ] [ 21 ] [ 22 ] El fuerte aumento en V m y la permeabilidad al sodio corresponden a la fase ascendente del potencial de acción. [ 8 ] [ 9 ] [ 21 ] [ 22 ]
El voltaje umbral crítico para esta condición de descontrol suele estar alrededor de −45 mV, pero depende de la actividad reciente del axón. Una célula que acaba de disparar un potencial de acción no puede disparar otro inmediatamente, ya que los canales de Na + no se han recuperado del estado inactivado. El período durante el cual no se puede disparar un nuevo potencial de acción se denomina período refractario absoluto . [ 44 ] [ 45 ] [ 46 ] En tiempos más prolongados, después de que algunos, pero no todos, los canales iónicos se hayan recuperado, el axón puede ser estimulado para producir otro potencial de acción, pero con un umbral más alto, lo que requiere una despolarización mucho más fuerte, por ejemplo, a −30 mV. El período durante el cual los potenciales de acción son inusualmente difíciles de evocar se denomina período refractario relativo . [ 44 ] [ 45 ] [ 46 ]
Fase máxima
La retroalimentación positiva de la fase ascendente se ralentiza y se detiene cuando los canales de iones de sodio se abren al máximo. En el pico del potencial de acción, la permeabilidad al sodio se maximiza y el voltaje de membrana V m es casi igual al voltaje de equilibrio del sodio E Na . Sin embargo, el mismo voltaje elevado que abrió inicialmente los canales de sodio también los cierra lentamente, al cerrar sus poros; los canales de sodio se inactivan . [ 40 ] Esto reduce la permeabilidad de la membrana al sodio en relación con el potasio, lo que hace que el voltaje de membrana vuelva al valor de reposo. Al mismo tiempo, el voltaje elevado abre los canales de potasio sensibles al voltaje; el aumento en la permeabilidad de la membrana al potasio hace que V m se acerque a E K . [ 40 ] En conjunto, estos cambios en la permeabilidad al sodio y al potasio hacen que V m caiga rápidamente, repolarizando la membrana y produciendo la "fase descendente" del potencial de acción. [ 44 ] [ 47 ] [ 22 ] [ 48 ]
Hiperpolarización posterior
El voltaje despolarizado abre canales de potasio dependientes de voltaje adicionales, y algunos de estos no se cierran inmediatamente cuando la membrana regresa a su voltaje de reposo normal. Además, se abren más canales de potasio en respuesta a la entrada de iones de calcio durante el potencial de acción. La concentración intracelular de iones de potasio es transitoriamente inusualmente baja, lo que hace que el voltaje de membrana V m se acerque aún más al voltaje de equilibrio del potasio E K . El potencial de membrana cae por debajo del potencial de membrana en reposo. Por lo tanto, hay un pico o hiperpolarización , denominado hiperpolarización posterior , que persiste hasta que la permeabilidad de la membrana al potasio regresa a su valor habitual, restaurando el potencial de membrana al estado de reposo. [ 49 ] [ 47 ]
Período refractario
Cada potencial de acción va seguido de un período refractario , que se puede dividir en un período refractario absoluto , durante el cual es imposible evocar otro potencial de acción, y luego un período refractario relativo , durante el cual se requiere un estímulo más fuerte de lo habitual. [ 44 ] [ 45 ] [ 46 ] Estos dos períodos refractarios son causados por cambios en el estado de las moléculas de los canales de sodio y potasio. Al cerrarse después de un potencial de acción, los canales de sodio entran en un estado "inactivado" , en el que no pueden abrirse independientemente del potencial de membrana; esto da lugar al período refractario absoluto. Incluso después de que un número suficiente de canales de sodio hayan vuelto a su estado de reposo, sucede frecuentemente que una fracción de los canales de potasio permanece abierta, lo que dificulta la despolarización del potencial de membrana y, por lo tanto, da lugar al período refractario relativo. Debido a que la densidad y los subtipos de canales de potasio pueden diferir mucho entre diferentes tipos de neuronas, la duración del período refractario relativo es muy variable.
El período refractario absoluto es en gran parte responsable de la propagación unidireccional de los potenciales de acción a lo largo de los axones. [ 50 ] En cualquier momento dado, el segmento de axón detrás de la parte activa es refractario, pero el segmento delante, al no haber sido activado recientemente, es capaz de ser estimulado por la despolarización del potencial de acción.
Propagación
El potencial de acción generado en el cono axónico se propaga como una onda a lo largo del axón. [ 51 ] Las corrientes que fluyen hacia adentro en un punto del axón durante un potencial de acción se extienden a lo largo del axón y despolarizan las secciones adyacentes de su membrana. Si es suficientemente fuerte, esta despolarización provoca un potencial de acción similar en los parches de membrana vecinos. Este mecanismo básico fue demostrado por Alan Lloyd Hodgkin en 1937. Después de aplastar o enfriar segmentos nerviosos y, por lo tanto, bloquear los potenciales de acción, demostró que un potencial de acción que llegaba a un lado del bloqueo podía provocar otro potencial de acción en el otro, siempre que el segmento bloqueado fuera suficientemente corto. [ l ]
Una vez que se ha producido un potencial de acción en un segmento de membrana, este necesita tiempo para recuperarse antes de poder disparar de nuevo. A nivel molecular, este periodo refractario absoluto corresponde al tiempo necesario para que los canales de sodio activados por voltaje se recuperen de la inactivación, es decir, para volver a su estado cerrado. [ 45 ] En las neuronas existen muchos tipos de canales de potasio activados por voltaje. Algunos se inactivan rápidamente (corrientes de tipo A) y otros se inactivan lentamente o no se inactivan en absoluto; esta variabilidad garantiza que siempre habrá una fuente de corriente disponible para la repolarización, incluso si algunos de los canales de potasio están inactivados debido a una despolarización previa. Por otro lado, todos los canales de sodio neuronales activados por voltaje se inactivan en cuestión de milisegundos durante una despolarización fuerte, lo que hace imposible la despolarización posterior hasta que una fracción sustancial de los canales de sodio haya vuelto a su estado cerrado. Aunque limita la frecuencia de disparo, [ 52 ] el periodo refractario absoluto asegura que el potencial de acción se mueva en una sola dirección a lo largo de un axón. [ 50 ] Las corrientes que fluyen debido a un potencial de acción se extienden en ambas direcciones a lo largo del axón. [ 53 ] Sin embargo, solo la parte no disparada del axón puede responder con un potencial de acción; la parte que acaba de dispararse no responde hasta que el potencial de acción está fuera de rango seguro y no puede volver a estimular esa parte. En la conducción ortodrómica usual , el potencial de acción se propaga desde el cono axónico hacia los botones sinápticos (los extremos axónicos); la propagación en la dirección opuesta, conocida como conducción antidrómica , es muy rara. [ 54 ] Sin embargo, si un axón de laboratorio se estimula en su medio, ambas mitades del axón están "frescas", es decir, no disparadas; entonces se generarán dos potenciales de acción, uno viajando hacia el cono axónico y el otro viajando hacia los botones sinápticos.
Mielina y conducción saltatoria

Para permitir una transducción rápida y eficiente de las señales eléctricas en el sistema nervioso, ciertos axones neuronales están cubiertos por vainas de mielina . La mielina es una membrana multilaminar que envuelve el axón en segmentos separados por intervalos conocidos como nódulos de Ranvier . Es producida por células especializadas: células de Schwann exclusivamente en el sistema nervioso periférico y oligodendrocitos exclusivamente en el sistema nervioso central . La vaina de mielina reduce la capacitancia de la membrana y aumenta la resistencia de la membrana en los intervalos entre nódulos, permitiendo así un movimiento rápido y saltatorio de potenciales de acción de nódulo a nódulo. [ m ] [ n ] [ o ] La mielinización se encuentra principalmente en vertebrados , pero se ha descubierto un sistema análogo en algunos invertebrados, como algunas especies de camarones . [ p ] No todas las neuronas en los vertebrados están mielinizadas; por ejemplo, los axones de las neuronas que componen el sistema nervioso autónomo no están, en general, mielinizados.
La mielina impide que los iones entren o salgan del axón a lo largo de los segmentos mielinizados. Por regla general, la mielinización aumenta la velocidad de conducción de los potenciales de acción y los hace más eficientes energéticamente. Ya sean saltatorios o no, la velocidad media de conducción de un potencial de acción oscila entre 1 metro por segundo (m/s) y más de 100 m/s, y, en general, aumenta con el diámetro del axón. [ q ]
Los potenciales de acción no pueden propagarse a través de la membrana en los segmentos mielinizados del axón. Sin embargo, la corriente es transportada por el citoplasma, lo cual es suficiente para despolarizar el primer o segundo nodo de Ranvier subsiguiente . En cambio, la corriente iónica de un potencial de acción en un nodo de Ranvier provoca otro potencial de acción en el siguiente nodo; este aparente "salto" del potencial de acción de nodo a nodo se conoce como conducción saltatoria . Aunque el mecanismo de la conducción saltatoria fue sugerido en 1925 por Ralph Lillie, [ r ] la primera evidencia experimental de la conducción saltatoria provino de Ichiji Tasaki [ s ] y Taiji Takeuchi [ t ] [ 55 ] y de Andrew Huxley y Robert Stämpfli. [ u ] Por el contrario, en los axones no mielinizados, el potencial de acción provoca otro en la membrana inmediatamente adyacente y se mueve continuamente a lo largo del axón como una onda.

La mielina tiene dos ventajas importantes: una rápida velocidad de conducción y una alta eficiencia energética. Para axones con un diámetro mayor a un diámetro mínimo (aproximadamente 1 micrómetro ), la mielinización aumenta la velocidad de conducción de un potencial de acción, típicamente diez veces. [ w ] Por el contrario, para una velocidad de conducción dada, las fibras mielinizadas son más pequeñas que sus contrapartes no mielinizadas. Por ejemplo, los potenciales de acción se mueven aproximadamente a la misma velocidad (25 m/s) en un axón mielinizado de rana y en un axón gigante no mielinizado de calamar , pero el axón de rana tiene un diámetro aproximadamente 30 veces menor y un área de sección transversal 1000 veces menor. Además, dado que las corrientes iónicas están confinadas a los nódulos de Ranvier, muchos menos iones se "filtran" a través de la membrana, lo que ahorra energía metabólica. Este ahorro es una ventaja selectiva significativa , ya que el sistema nervioso humano utiliza aproximadamente el 20% de la energía metabólica del cuerpo. [ w ]
La longitud de los segmentos mielinizados de los axones es importante para el éxito de la conducción saltatoria. Deben ser lo más largos posible para maximizar la velocidad de conducción, pero no tanto como para que la señal que llega sea demasiado débil para provocar un potencial de acción en el siguiente nodo de Ranvier. En la naturaleza, los segmentos mielinizados suelen ser lo suficientemente largos como para que la señal propagada pasivamente viaje al menos dos nodos, conservando la amplitud suficiente para generar un potencial de acción en el segundo o tercer nodo. Por lo tanto, el factor de seguridad de la conducción saltatoria es alto, lo que permite que la transmisión evite los nodos en caso de lesión. Sin embargo, los potenciales de acción pueden terminar prematuramente en ciertos puntos donde el factor de seguridad es bajo, incluso en neuronas no mielinizadas; un ejemplo común es el punto de ramificación de un axón, donde se divide en dos. [ 57 ]
Algunas enfermedades degradan la mielina y alteran la conducción saltatoria, reduciendo la velocidad de conducción de los potenciales de acción. [ x ] La más conocida de ellas es la esclerosis múltiple , en la que la degradación de la mielina altera el movimiento coordinado. [ 58 ]
Teoría del cable

El flujo de corrientes dentro de un axón puede describirse cuantitativamente mediante la teoría de cables [ 59 ] y sus elaboraciones, como el modelo compartimental. [ 60 ] La teoría de cables fue desarrollada en 1855 por Lord Kelvin para modelar el cable telegráfico transatlántico [ y ] y Hodgkin y Rushton demostraron su relevancia para las neuronas en 1946. [ z ] En la teoría de cables simple, la neurona se trata como un cable de transmisión perfectamente cilíndrico y eléctricamente pasivo, que puede describirse mediante una ecuación diferencial parcial . [ 59 ]
donde V ( x , t ) es el voltaje a través de la membrana en un instante t y una posición x a lo largo de la neurona, y donde λ y τ son las escalas características de longitud y tiempo en las que dichos voltajes decaen en respuesta a un estímulo. Consultando el diagrama del circuito de la derecha, estas escalas pueden determinarse a partir de las resistencias y capacitancias por unidad de longitud. [ 61 ]
Estas escalas de tiempo y longitud pueden usarse para comprender la dependencia de la velocidad de conducción del diámetro de la neurona en fibras amielínicas. Por ejemplo, la escala de tiempo τ aumenta con la resistencia de la membrana r m y la capacitancia c m . A medida que aumenta la capacitancia, se debe transferir más carga para producir un voltaje transmembrana dado (por la ecuación Q = CV ); a medida que aumenta la resistencia, se transfiere menos carga por unidad de tiempo, lo que hace que el equilibrio sea más lento. De manera similar, si la resistencia interna por unidad de longitud r i es menor en un axón que en otro (por ejemplo, porque el radio del primero es mayor), la longitud de decaimiento espacial λ se hace más larga y la velocidad de conducción de un potencial de acción debería aumentar. Si la resistencia transmembrana r m aumenta, eso disminuye la corriente de "fuga" promedio a través de la membrana, lo que también hace que λ se haga más larga, aumentando la velocidad de conducción.
Terminación
sinapsis químicas
En general, los potenciales de acción que llegan a los botones sinápticos provocan la liberación de un neurotransmisor en la hendidura sináptica. [ aa ] Los neurotransmisores son moléculas pequeñas que pueden abrir canales iónicos en la célula postsináptica; la mayoría de los axones tienen el mismo neurotransmisor en todos sus extremos. La llegada del potencial de acción abre canales de calcio sensibles al voltaje en la membrana presináptica; la entrada de calcio provoca que las vesículas llenas de neurotransmisor migren a la superficie celular y liberen su contenido en la hendidura sináptica . [ ab ] Este complejo proceso es inhibido por las neurotoxinas tetanospasmina y toxina botulínica , responsables del tétanos y el botulismo , respectivamente. [ ac ]

sinapsis eléctricas
Algunas sinapsis prescinden del intermediario del neurotransmisor y conectan las células presinápticas y postsinápticas. [ ad ] Cuando un potencial de acción llega a una de estas sinapsis, las corrientes iónicas que fluyen hacia la célula presináptica pueden cruzar la barrera de las dos membranas celulares y entrar en la célula postsináptica a través de poros conocidos como conexones . [ ae ] De este modo, las corrientes iónicas del potencial de acción presináptico pueden estimular directamente la célula postsináptica. Las sinapsis eléctricas permiten una transmisión más rápida porque no requieren la lenta difusión de los neurotransmisores a través de la hendidura sináptica. Por lo tanto, las sinapsis eléctricas se utilizan siempre que la respuesta rápida y la coordinación temporal son cruciales, como en los reflejos de escape , la retina de los vertebrados y el corazón .
Uniones neuromusculares
Un caso especial de sinapsis química es la unión neuromuscular , en la que el axón de una neurona motora termina en una fibra muscular . [ af ] En estos casos, el neurotransmisor liberado es la acetilcolina , que se une al receptor de acetilcolina, una proteína de membrana integral en la membrana (el sarcolema ) de la fibra muscular. [ ag ] Sin embargo, la acetilcolina no permanece unida; en cambio, se disocia y es hidrolizada por la enzima acetilcolinesterasa , ubicada en la sinapsis. Esta enzima reduce rápidamente el estímulo al músculo, lo que permite regular con precisión el grado y el momento de la contracción muscular. Algunos venenos inactivan la acetilcolinesterasa para impedir este control, como los agentes nerviosos sarín y tabún , [ ah ] y los insecticidas diazinón y malatión . [ ai ]
Otros tipos de células
Potenciales de acción cardíaca

El potencial de acción cardíaco se diferencia del potencial de acción neuronal por tener una meseta prolongada, en la que la membrana se mantiene a un voltaje alto durante unos cientos de milisegundos antes de ser repolarizada por la corriente de potasio como de costumbre. [ aj ] Esta meseta se debe a la acción de los canales de calcio, que se abren más lentamente y mantienen el voltaje de la membrana cerca de su potencial de equilibrio incluso después de que los canales de sodio se hayan inactivado.
El potencial de acción cardíaco desempeña un papel importante en la coordinación de la contracción del corazón. [ aj ] Las células cardíacas del nódulo sinoauricular proporcionan el potencial marcapasos que sincroniza el corazón. Los potenciales de acción de estas células se propagan hacia y a través del nódulo auriculoventricular (nódulo AV), que normalmente es la única vía de conducción entre las aurículas y los ventrículos . Los potenciales de acción del nódulo AV viajan a través del haz de His y de allí a las fibras de Purkinje . [ nota 2 ] Por el contrario, las anomalías en el potencial de acción cardíaco, ya sea debido a una mutación congénita o a una lesión, pueden provocar patologías humanas, especialmente arritmias . [ aj ] Varios fármacos antiarrítmicos actúan sobre el potencial de acción cardíaco, como la quinidina , la lidocaína , los betabloqueantes y el verapamilo . [ ak ]
Potenciales de acción muscular
El potencial de acción en una célula muscular esquelética normal es similar al potencial de acción en las neuronas. [ 62 ] Los potenciales de acción resultan de la despolarización de la membrana celular (el sarcolema ), que abre los canales de sodio sensibles al voltaje; estos se inactivan y la membrana se repolariza a través de la corriente saliente de iones de potasio. El potencial de reposo previo al potencial de acción es típicamente de −90 mV, algo más negativo que el de las neuronas típicas. El potencial de acción muscular dura aproximadamente de 2 a 4 ms, el período refractario absoluto es de aproximadamente 1 a 3 ms, y la velocidad de conducción a lo largo del músculo es de aproximadamente 5 m/s. El potencial de acción libera iones de calcio que liberan la tropomiosina y permiten que el músculo se contraiga. Los potenciales de acción musculares son provocados por la llegada de un potencial de acción neuronal presináptico a la unión neuromuscular , que es un objetivo común de las neurotoxinas . [ ah ]
Potenciales de acción de las plantas
Las células vegetales y fúngicas [ al ] también son eléctricamente excitables. La diferencia fundamental con los potenciales de acción animales es que la despolarización en las células vegetales no se logra mediante la absorción de iones de sodio positivos, sino mediante la liberación de iones de cloruro negativos . [ am ] [ an ] [ ao ] En 1906, JC Bose publicó las primeras mediciones de potenciales de acción en plantas, que habían sido descubiertos previamente por Burdon-Sanderson y Darwin. [ 63 ] Un aumento en los iones de calcio citoplasmáticos puede ser la causa de la liberación de aniones en la célula. Esto hace que el calcio sea un precursor de los movimientos iónicos, como la entrada de iones de cloruro negativos y la salida de iones de potasio positivos, como se observa en las hojas de cebada. [ 64 ]
La entrada inicial de iones de calcio también provoca una pequeña despolarización celular, lo que hace que se abran los canales iónicos dependientes del voltaje y permite que la despolarización completa se propague por los iones de cloruro.
Algunas plantas (por ejemplo , Dionaea muscipula ) utilizan canales iónicos activados por sodio para controlar sus movimientos y "contar" los eventos de estimulación para determinar si se alcanza un umbral de movimiento. Dionaea muscipula , también conocida como venus atrapamoscas, se encuentra en humedales subtropicales de Carolina del Norte y del Sur. [ 65 ] Cuando el suelo es pobre en nutrientes, la venus atrapamoscas se alimenta de insectos y animales. [ 66 ] A pesar de las investigaciones sobre esta planta, aún no se comprende la base molecular de las venus atrapamoscas ni de las plantas carnívoras en general. [ 67 ]
Sin embargo, se han realizado numerosas investigaciones sobre los potenciales de acción y cómo afectan al movimiento y al mecanismo interno de la Venus atrapamoscas. Para empezar, el potencial de membrana en reposo de la Venus atrapamoscas (−120 mV) es menor que el de las células animales (generalmente de −90 mV a −40 mV). [ 67 ] [ 68 ] El menor potencial en reposo facilita la activación de un potencial de acción. Así, cuando un insecto se posa en la trampa de la planta, activa un mecanorreceptor con forma de pelo. [ 67 ] Este receptor activa entonces un potencial de acción que dura alrededor de 1,5 ms. [ 69 ] Esto provoca un aumento de iones de calcio positivos en la célula, despolarizándola ligeramente. Sin embargo, la atrapamoscas no se cierra tras una sola activación. En cambio, requiere la activación de dos o más pelos. [ 66 ] [ 67 ] Si solo se activa un pelo, descarta la activación como un falso positivo. Además, el segundo pelo debe activarse dentro de un intervalo de tiempo determinado (0,75–40 s) para que se registre con la primera activación. [ 67 ] Por lo tanto, comienza una acumulación de calcio que luego disminuye lentamente después del primer estímulo. Cuando se dispara el segundo potencial de acción dentro del intervalo de tiempo, alcanza el umbral de calcio para despolarizar la célula, cerrando la trampa sobre la presa en una fracción de segundo. [ 67 ]
Junto con la liberación subsiguiente de iones de potasio positivos, el potencial de acción en las plantas implica una pérdida osmótica de sal (KCl). En cambio, el potencial de acción animal es osmóticamente neutro porque cantidades iguales de sodio que entra y potasio que sale se cancelan mutuamente osmóticamente. La interacción de las relaciones eléctricas y osmóticas en las células vegetales [ ap ] parece haber surgido de una función osmótica de excitabilidad eléctrica en un ancestro unicelular común de plantas y animales bajo condiciones de salinidad cambiantes. Además, la función actual de transmisión rápida de señales se considera un logro más reciente de las células metazoarias en un entorno osmótico más estable. [ 70 ] Es probable que la función de señalización familiar de los potenciales de acción en algunas plantas vasculares (por ejemplo, Mimosa pudica ) haya surgido independientemente de la de las células excitables metazoarias.
A diferencia de la fase ascendente y el pico, la fase descendente y la hiperpolarización posterior parecen depender principalmente de cationes distintos del calcio. Para iniciar la repolarización, la célula requiere el movimiento de potasio hacia fuera de la célula mediante transporte pasivo en la membrana. Esto difiere de las neuronas porque el movimiento de potasio no domina la disminución del potencial de membrana. Para repolarizarse completamente, una célula vegetal requiere energía en forma de ATP para ayudar en la liberación de hidrógeno de la célula, utilizando un transportador llamado ATPasa de protones . [ 71 ] [ 67 ]
Distribución taxonómica y ventajas evolutivas
Los potenciales de acción se encuentran en todos los organismos multicelulares , incluyendo plantas , invertebrados como insectos y vertebrados como reptiles y mamíferos . [ aq ] Las esponjas parecen ser el principal filo de eucariotas multicelulares que no transmite potenciales de acción, aunque algunos estudios han sugerido que estos organismos también tienen una forma de señalización eléctrica. [ ar ] El potencial de reposo, así como el tamaño y la duración del potencial de acción, no han variado mucho con la evolución, aunque la velocidad de conducción sí varía drásticamente con el diámetro axonal y la mielinización.
Dada su conservación a lo largo de la evolución, el potencial de acción parece conferir ventajas evolutivas. Una función de los potenciales de acción es la señalización rápida y de largo alcance dentro del organismo; la velocidad de conducción puede superar los 110 m/s, que es un tercio de la velocidad del sonido . En comparación, una molécula de hormona transportada en el torrente sanguíneo se mueve a unos 8 m/s en las arterias grandes. Parte de esta función es la estrecha coordinación de eventos mecánicos, como la contracción del corazón. Una segunda función es el cálculo asociado a su generación. Al ser una señal de todo o nada que no se atenúa con la distancia de transmisión, el potencial de acción tiene ventajas similares a las de la electrónica digital . La integración de varias señales dendríticas en el cono axónico y su umbral para formar un tren complejo de potenciales de acción es otra forma de cálculo, que se ha explotado biológicamente para formar generadores de patrones centrales y se ha imitado en redes neuronales artificiales .
Se cree que el ancestro común procariota/eucariota, que vivió hace quizás cuatro mil millones de años, poseía canales iónicos dependientes de voltaje. Es probable que esta funcionalidad se utilizara posteriormente para proporcionar un mecanismo de comunicación. Incluso las bacterias unicelulares modernas pueden utilizar potenciales de acción para comunicarse con otras bacterias en la misma biopelícula . [ 73 ]
Métodos experimentales

El estudio de los potenciales de acción ha requerido el desarrollo de nuevos métodos experimentales. El trabajo inicial, anterior a 1955, fue realizado principalmente por Alan Lloyd Hodgkin y Andrew Fielding Huxley , quienes, junto con John Carew Eccles , recibieron el Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 1963 por su contribución a la descripción de la base iónica de la conducción nerviosa. Se centró en tres objetivos: aislar las señales de neuronas o axones individuales, desarrollar electrónica rápida y sensible, y reducir el tamaño de los electrodos lo suficiente como para poder registrar el voltaje dentro de una sola célula.
El primer problema se resolvió estudiando los axones gigantes encontrados en las neuronas del calamar ( Loligo forbesii y Doryteuthis pealeii , en ese momento clasificado como Loligo pealeii ). [ as ] Estos axones son tan grandes en diámetro (aproximadamente 1 mm, o 100 veces más grandes que una neurona típica) que se pueden ver a simple vista, lo que hace que sean fáciles de extraer y manipular. [ j ] [ at ] Sin embargo, no son representativos de todas las células excitables, y se han estudiado numerosos otros sistemas con potenciales de acción.
El segundo problema se abordó con el desarrollo crucial del fijador de voltaje , [ au ] que permitió a los experimentadores estudiar las corrientes iónicas subyacentes a un potencial de acción de forma aislada y eliminó una fuente clave de ruido electrónico : la corriente I C asociada a la capacitancia C de la membrana. [ 75 ] Dado que la corriente es igual a C multiplicada por la tasa de cambio del voltaje transmembrana V m , la solución fue diseñar un circuito que mantuviera V m fijo (tasa de cambio cero) independientemente de las corrientes que fluyen a través de la membrana. Por lo tanto, la corriente necesaria para mantener V m en un valor fijo es un reflejo directo de la corriente que fluye a través de la membrana. Otros avances electrónicos incluyeron el uso de jaulas de Faraday y electrónica con alta impedancia de entrada , de modo que la medición en sí misma no afectara al voltaje que se estaba midiendo. [ 76 ]
El tercer problema, el de obtener electrodos lo suficientemente pequeños como para registrar voltajes dentro de un solo axón sin perturbarlo, se resolvió en 1949 con la invención del electrodo de micropipeta de vidrio, [ av ] que fue rápidamente adoptado por otros investigadores. [ aw ] [ ax ] Los refinamientos de este método permiten producir puntas de electrodo tan finas como 100 Å (10 nm ), lo que también confiere una alta impedancia de entrada. [ 77 ] Los potenciales de acción también pueden registrarse con pequeños electrodos metálicos colocados justo al lado de una neurona, con neurochips que contienen EOSFET , u ópticamente con colorantes sensibles al Ca2 + o al voltaje. [ ay ]

Mientras que los electrodos de micropipeta de vidrio miden la suma de las corrientes que pasan a través de muchos canales iónicos, el estudio de las propiedades eléctricas de un solo canal iónico se hizo posible en la década de 1970 con el desarrollo de la técnica de patch clamp por Erwin Neher y Bert Sakmann . Por este descubrimiento, fueron galardonados con el Premio Nobel de Fisiología o Medicina en 1991. [ γ ] La técnica de patch clamp verificó que los canales iónicos tienen estados discretos de conductancia, como abierto, cerrado e inactivado.
En los últimos años se han desarrollado tecnologías de imagen óptica para medir potenciales de acción, ya sea mediante registros simultáneos en múltiples sitios o con resolución ultraespacial. Utilizando colorantes sensibles al voltaje , se han registrado ópticamente potenciales de acción en un pequeño fragmento de la membrana de un cardiomiocito . [ az ]
Neurotoxinas
Varias neurotoxinas , tanto naturales como sintéticas, funcionan bloqueando el potencial de acción. La tetrodotoxina del pez globo y la saxitoxina del género Gonyaulax (el género de dinoflagelados responsable de las " mareas rojas ") bloquean los potenciales de acción al inhibir el canal de sodio sensible al voltaje; [ ba ] de manera similar, la dendrotoxina de la serpiente mamba negra inhibe el canal de potasio sensible al voltaje. Estos inhibidores de los canales iónicos cumplen una importante función en la investigación, ya que permiten a los científicos "desactivar" canales específicos a voluntad, aislando así las contribuciones de otros canales; también pueden ser útiles para purificar canales iónicos mediante cromatografía de afinidad o para analizar su concentración. Sin embargo, estos inhibidores también son neurotoxinas eficaces y se ha considerado su uso como armas químicas . Las neurotoxinas dirigidas a los canales iónicos de los insectos han sido insecticidas eficaces ; un ejemplo es la permetrina sintética , que prolonga la activación de los canales de sodio implicados en los potenciales de acción. Los canales iónicos de los insectos son lo suficientemente diferentes de sus homólogos humanos como para que en los humanos se produzcan pocos efectos secundarios.
Historia

El papel de la electricidad en los sistemas nerviosos de los animales fue observado por primera vez en ranas disecadas por Luigi Galvani , quien la estudió entre 1791 y 1797. [ bb ] Los resultados de Galvani inspiraron a Alessandro Volta a desarrollar la pila voltaica —la primera batería eléctrica conocida— con la que estudió la electricidad animal (como la de las anguilas eléctricas ) y las respuestas fisiológicas a los voltajes de corriente continua aplicados . [ bc ]
In the 19th century scientists studied the propagation of electrical signals in whole nerves (i.e., bundles of neurons) and demonstrated that nervous tissue was made up of cells, instead of an interconnected network of tubes (a reticulum).[78]Carlo Matteucci followed up Galvani's studies and demonstrated that injured nerves and muscles in frogs could produce direct current. Matteucci's work inspired the German physiologist, Emil du Bois-Reymond, who discovered in 1843 that stimulating these muscle and nerve preparations produced a notable diminution in their resting currents, making him the first researcher to identify the electrical nature of the action potential.[79] The conduction velocity of action potentials was then measured in 1850 by du Bois-Reymond's friend, Hermann von Helmholtz.[80] Progress in electrophysiology stagnated thereafter due to the limitations of chemical theory and experimental practice. To establish that nervous tissue is made up of discrete cells, the Spanish physician Santiago Ramón y Cajal and his students used a stain developed by Camillo Golgi to reveal the myriad shapes of neurons, which they rendered painstakingly. For their discoveries, Golgi and Ramón y Cajal were awarded the 1906 Nobel Prize in Physiology.[δ] Their work resolved a long-standing controversy in the neuroanatomy of the 19th century; Golgi himself had argued for the network model of the nervous system.

El siglo XX presenció avances significativos en electrofisiología. En 1902 y nuevamente en 1912, Julius Bernstein planteó la hipótesis de que el potencial de acción resultaba de un cambio en la permeabilidad de la membrana axonal a los iones. [ bd ] [ 81 ] La hipótesis de Bernstein fue confirmada por Ken Cole y Howard Curtis, quienes demostraron que la conductancia de la membrana aumenta durante un potencial de acción. [ be ] En 1907, Louis Lapicque sugirió que el potencial de acción se generaba al cruzarse un umbral, [ bf ] lo que más tarde se demostraría como un producto de los sistemas dinámicos de conductancias iónicas. En 1949, Alan Hodgkin y Bernard Katz refinaron la hipótesis de Bernstein al considerar que la membrana axonal podría tener diferentes permeabilidades a diferentes iones; en particular, demostraron el papel crucial de la permeabilidad al sodio para el potencial de acción. [ bg ] Realizaron el primer registro real de los cambios eléctricos a través de la membrana neuronal que median el potencial de acción. [ ε ] Esta línea de investigación culminó en los cinco artículos de 1952 de Hodgkin, Katz y Andrew Huxley , en los que aplicaron la técnica de fijación de voltaje para determinar la dependencia de las permeabilidades de la membrana axonal a los iones de sodio y potasio con respecto al voltaje y el tiempo, a partir de lo cual pudieron reconstruir el potencial de acción cuantitativamente. [ j ] Hodgkin y Huxley correlacionaron las propiedades de su modelo matemático con canales iónicos discretos que podían existir en varios estados diferentes, incluyendo "abierto", "cerrado" e "inactivado". Sus hipótesis fueron confirmadas a mediados de las décadas de 1970 y 1980 por Erwin Neher y Bert Sakmann , quienes desarrollaron la técnica de patch clamping para examinar los estados de conductancia de los canales iónicos individuales. [ bh ] En el siglo XXI, los investigadores están empezando a comprender la base estructural de estos estados de conductancia y de la selectividad de los canales para sus especies de iones, [ bi ] a través de las estructuras cristalinas de resolución atómica , [ bj ] mediciones de distancia de fluorescencia [ bk ] y estudios de criomicroscopía electrónica .[ bl ]
Julius Bernstein también fue el primero en introducir la ecuación de Nernst para el potencial de reposo a través de la membrana; esta fue generalizada por David E. Goldman a la ecuación epónima de Goldman en 1943. [ i ] La bomba de sodio-potasio fue identificada en 1957 [ bm ] [ ζ ] y sus propiedades fueron dilucidadas gradualmente, [ bn ] [ bo ] [ bp ] culminando en la determinación de su estructura de resolución atómica por cristalografía de rayos X. [ bq ] Las estructuras cristalinas de bombas iónicas relacionadas también han sido resueltas, lo que proporciona una visión más amplia de cómo funcionan estas máquinas moleculares . [ br ]
Modelos cuantitativos

Los modelos matemáticos y computacionales son esenciales para comprender el potencial de acción y ofrecen predicciones que pueden contrastarse con datos experimentales, proporcionando una prueba rigurosa de una teoría. El modelo neuronal más importante y preciso de los primeros modelos es el modelo de Hodgkin-Huxley , que describe el potencial de acción mediante un conjunto acoplado de cuatro ecuaciones diferenciales ordinarias (EDO). [ j ] Aunque el modelo de Hodgkin-Huxley puede ser una simplificación con pocas limitaciones [ 82 ] en comparación con la membrana nerviosa real tal como existe en la naturaleza, su complejidad ha inspirado varios modelos aún más simplificados, [ 83 ] [ bs ] como el modelo de Morris-Lecar [ bt ] y el modelo de FitzHugh-Nagumo , [ bu ] ambos con solo dos EDO acopladas. Las propiedades de los modelos de Hodgkin-Huxley y FitzHugh-Nagumo y sus parientes, como el modelo de Bonhoeffer-Van der Pol, [ bv ] han sido bien estudiadas dentro de las matemáticas, [ 84 ] [ bw ] la computación [ 85 ] y la electrónica. [ bx ] Sin embargo, los modelos simples de potencial generador y potencial de acción no logran reproducir con precisión la tasa de picos neuronales cerca del umbral y la forma del pico, específicamente para los mecanorreceptores como el corpúsculo de Pacini . [ 86 ] La investigación más moderna se ha centrado en sistemas más grandes e integrados; al combinar modelos de potencial de acción con modelos de otras partes del sistema nervioso (como dendritas y sinapsis), los investigadores pueden estudiar la computación neuronal [ 87 ] y reflejos simples , como los reflejos de escape y otros controlados por generadores de patrones centrales . [ 88 ] [ por ]
Véase también
Notas
- ↑ En general, si bien esta descripción simple de la iniciación del potencial de acción es precisa, no explica fenómenos como el bloqueo de la excitación (la capacidad de impedir que las neuronas generen potenciales de acción estimulándolas con grandes pasos de corriente) y la capacidad de generar potenciales de acción hiperpolarizando brevemente la membrana. Sin embargo, al analizar la dinámica de un sistema de canales de sodio y potasio en un parche de membrana mediante modelos computacionales , estos fenómenos se explican fácilmente. [ α ]
- ↑ Estas fibras de Purkinje son fibras musculares y no están relacionadas con las células de Purkinje , que son neuronas que se encuentran en el cerebelo .
Referencias
Notas a pie de página
- ↑ Hodgkin AL, Huxley AF (agosto de 1952). "Una descripción cuantitativa de la corriente de membrana y su aplicación a la conducción y excitación en el nervio" . The Journal of Physiology . 117 (4): 500– 44. doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004764 . PMC 1392413. PMID 12991237 .
- ↑ Williams JA (febrero de 1981). "Correlatos eléctricos de la secreción en células endocrinas y exocrinas". Fed Proc . 40 (2): 128– 34. PMID 6257554 .
- ↑ "Contracción del músculo cardíaco" . Consultado el 28 de mayo de 2021 .
- ↑ Purves et al. 2008 , pág. 26.
- ↑ Pickard B (junio de 1973). "Potenciales de acción en plantas superiores" (PDF) . The Botanical Review . 39 (2): 172–201 . Bibcode : 1973BotRv..39..172P . doi : 10.1007/BF02859299 . S2CID 5026557. Archivado del original (PDF) el 27 de agosto de 2021. Recuperado el 14 de abril de 2020 . Error de cita: Parámetro desconocido "name"packard_1973"" en la
<ref>etiqueta; los parámetros admitidos son dir, follow, group, name (consulte la página de ayuda ). - ↑ Leterrier C (febrero de 2018). "El segmento inicial del axón: una perspectiva actualizada" . The Journal of Neuroscience . 38 (9): 2135– 2145. doi : 10.1523/JNEUROSCI.1922-17.2018 . PMC 6596274. PMID 29378864 .
- ↑ Purves D, Augustine GJ, Fitzpatrick D, et al., eds. (2001). "Canales iónicos dependientes de voltaje" . Neurociencia (2.ª ed.). Sunderland, MA: Sinauer Associates. Archivado del original el 5 de junio de 2018. Recuperado el 29 de agosto de 2017 .
- ^ Bullock , Orkand y Grinnell 1977 ,págs . 150-151 .
- ^ Junge 1981 , págs . 89–90 .
- ^ Schmidt -Nielsen 1997 , pág. 484.
- ^ Purves et al . 2008 , págs. 48–49; Bullock, Orkand y Grinnell 1977 , pág. 141; Schmidt-Nielsen 1997 , pág. 483; Junge 1981 , pág. 89.
- ↑ Stevens 1966 , pág. 127.
- ↑ Schmidt-Nielsen , pág. 484.
- ↑ Tamagawa H, Funatani M, Ikeda K (enero de 2016). "La teoría de adsorción de Ling como mecanismo de generación de potencial de membrana observado en sistemas vivos y no vivos" . Membranes . 6 ( 1): 11. doi : 10.3390/membranes6010011 . PMC 4812417. PMID 26821050 .
- 1 2 3 4 5 Sanes DH, Reh TA (1 de enero de 2012). Desarrollo del sistema nervioso (Tercera ed.). Elsevier Academic Press. págs. 211–214 . ISBN 9780080923208OCLC 762720374
- ↑ Partridge D (1991). Canales de calcio: sus propiedades, funciones, regulación y relevancia clínica . CRC Press. págs. 138–142 . ISBN 9780849388071.
- ↑ Black I (1984). Biología celular y molecular del desarrollo neuronal | Ira Black | Springer . Springer. pág. 103. ISBN 978-1-4613-2717-2Archivado del original el 17 de julio de 2017 .
- ↑Pedersen R (1998). Current Topics in Developmental Biology, Volume 39. Elsevier Academic Press. ISBN 9780080584621.
- ↑Bullock, Orkand & Grinnell 1977, p. 11.
- ↑Silverthorn 2010, p. 253.
- 123Purves et al. 2008, pp. 49–50; Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 140–141; Schmidt-Nielsen 1997, pp. 480–481.
- 1234Schmidt-Nielsen 1997, pp. 483–484.
- ↑Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 177–240; Schmidt-Nielsen 1997, pp. 490–499; Stevens 1966, p. 47–68.
- ↑Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 178–180; Schmidt-Nielsen 1997, pp. 490–491.
- ↑Purves et al. 2001.
- ↑Purves et al. 2008, pp. 26–28.
- ↑"Myelination Increases the Spatial Extent of Analog Modulation of Synaptic Transmission: A Modeling Study". Frontiers in Cellular Neuroscience.
- ↑Zbili, M.; Debanne, D. (2019). "Past and Future of Analog-Digital Modulation of Synaptic Transmission". Frontiers in Cellular Neuroscience. 13 160. doi:10.3389/fncel.2019.00160. PMC 6492051. PMID 31105529.
- ↑Clark, Beverley; Häusser, Michael (8 August 2006). "Neural Coding: Analog Signalling in Axons". Current Biology. 16 (15): R585–R588. doi:10.1016/j.cub.2006.07.007. PMID 16890514. S2CID 8295969.
- ↑Liu, Wenke; Liu, Qing; Crozier, Robert A.; Davis, Robin L. (2021). "Analog transmission of action potential fine structure in spiral ganglion axons". Journal of Neurophysiology. 126 (3): 888–905. doi:10.1152/jn.00237.2021. PMC 8461829. PMID 34346782.
- ↑Schmidt-Nielsen 1997, pp. 535–580; Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 49–56, 76–93, 247–255; Stevens 1966, pp. 69–79.
- ↑Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 53; Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 122–124.
- ↑Junge 1981, pp. 115–132.
- 12Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 152–153.
- ↑Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 444–445.
- ↑Purves et al. 2008, p. 38.
- ↑Stevens 1966, pp. 127–128.
- ↑Purves et al. 2008, pp. 61–65.
- ↑Purves et al. 2008, pp. 64–74; Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 149–150; Junge 1981, pp. 84–85; Stevens 1966, pp. 152–158.
- 123Purves et al. 2008, p. 47; Purves et al. 2008, p. 65; Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 147–148; Stevens 1966, p. 128.
- ↑Goldin, AL in Waxman 2007, Neuronal Channels and Receptors, pp. 43–58.
- ↑Stevens 1966, p. 49.
- ↑Purves et al. 2008, p. 34; Bullock, Orkand & Grinnell 1977, p. 134; Schmidt-Nielsen 1997, pp. 478–480.
- 1234Purves et al. 2008, p. 49.
- 1234Stevens 1966, pp. 19–20.
- 123Bullock, Orkand & Grinnell 1977, p. 151; Junge 1981, pp. 4–5.
- 12Bullock, Orkand & Grinnell 1977, p. 152.
- ↑Bullock, Orkand & Grinnell 1977, pp. 147–149; Stevens 1966, pp. 126–127.
- ↑Purves et al. 2008, p. 37.
- 12Purves et al. 2008, p. 56.
- ^ Bullock, Orkand y Grinnell 1977 , págs .
- ↑ Stevens 1966 , págs. 21–23.
- ^ Bullock, Orkand y Grinnell 1977 , págs .
- ^ Bullock, Orkand y Grinnell 1977 , pág. 509.
- ↑ Tasaki, I en Field 1959 , págs. 75–121
- ↑ Schmidt-Nielsen 1997 , Figura 12.13.
- ^ Bullock, Orkand y Grinnell 1977 , pág. 163.
- ↑ Waxman, SG en Waxman 2007 , Esclerosis múltiple como enfermedad neurodegenerativa , págs. 333–346.
- 1 2 Rall, W en Koch & Segev 1989 , Teoría del cable para neuronas dendríticas , pp. 9–62.
- ↑ Segev I, Fleshman JW, Burke RE (1989). «Modelos compartimentales de neuronas complejas». En Koch C , Segev I (eds.). Métodos en modelado neuronal: de las sinapsis a las redes . Cambridge, Massachusetts: The MIT Press. pp. 63–96 . ISBN 978-0-262-11133-1LCCN 88008279 . OCLC 18384545 .
- ↑ Purves et al. 2008 , págs. 52–53.
- ^ Ganong 1991 , págs. 59–60.
- ↑ Tandon, Prakash N (1 de julio de 2019). "Jagdish Chandra Bose y la neurobiología vegetal: Parte I" (PDF) . Indian Journal of History of Science . 54 (2). doi : 10.16943/ijhs/2019/v54i2/49660 . ISSN 0019-5235 .
- ↑ Felle HH, Zimmermann MR (junio de 2007). "Señalización sistémica en la cebada a través de potenciales de acción". Planta . 226 ( 1) 203: 203– 14. Bibcode : 2007Plant.226..203F . doi : 10.1007/s00425-006-0458-y . PMID 17226028. S2CID 5059716 .
- ↑ Luken JO (diciembre de 2005). "Hábitats of Dionaea muscipula (Venus' Fly Trap), Droseraceae, Associated with Carolina Bays". Southeastern Naturalist . 4 (4): 573– 584. doi : 10.1656/1528-7092(2005)004 [ 0573:HODMVF ] 2.0.CO ; 2 . ISSN 1528-7092 . S2CID 9246114 .
- 1 2 Böhm J, Scherzer S, Krol E, Kreuzer I, von Meyer K, Lorey C, et al. (febrero de 2016). "La venus atrapamoscas Dionaea muscipula cuenta los potenciales de acción inducidos por las presas para inducir la absorción de sodio" . Current Biology . 26 (3): 286– 95. Bibcode : 2016CBio...26..286B . doi : 10.1016/j.cub.2015.11.057 . PMC 4751343. PMID 26804557 .
- 1 2 3 4 5 6 7 Hedrich R, Neher E (marzo de 2018). "Venus Flytrap: Cómo funciona una planta carnívora excitable". Trends in Plant Science . 23 (3): 220– 234. Bibcode : 2018TPS....23..220H . doi : 10.1016/j.tplants.2017.12.004 . PMID 29336976 .
- ↑ Purves D, Augustine GJ, Fitzpatrick D, et al., editores. Neurociencia. 2.ª edición. Sunderland (MA): Sinauer Associates; 2001. Potenciales eléctricos a través de las membranas de las células nerviosas. Disponible en:
- ↑ Volkov AG, Adesina T, Jovanov E (mayo de 2007). "Cierre de la venus atrapamoscas mediante estimulación eléctrica de las células motoras" . Plant Signaling & Behavior . 2 (3): 139– 45. Bibcode : 2007PlSiB...2..139V . doi : 10.4161/psb.2.3.4217 . PMC 2634039. PMID 19516982 .
- ↑ Gradmann, D; Mummert, H en Spanswick, Lucas y Dainty 1980 , Potenciales de acción de las plantas , pp. 333–344.
- ↑ Opritov, VA, et al. "Acoplamiento directo de la generación de potencial de acción en células de una planta superior (Cucurbita pepo) con el funcionamiento de una bomba electrogénica." Russian Journal of Plant Physiology , vol. 49, n.º 1, 2002, pp. 142–147.
- ↑ Bullock y Horridge 1965 .
- ↑ Kristan WB (octubre de 2016). "Evolución temprana de las neuronas" . Current Biology . 26 (20): R949– R954. Bibcode : 2016CBio...26.R949K . doi : 10.1016/j.cub.2016.05.030 . PMID 27780067 .
- ↑ Hellier JL (2014). El cerebro, el sistema nervioso y sus enfermedades . ABC-Clio. pág. 532. ISBN 9781610693387.
- ↑ Junge 1981 , págs. 63–82.
- ↑ Kettenmann y Grantyn 1992 .
- ↑ Snell, FM en Lavallée, Schanne y Hébert 1969 , Algunas propiedades eléctricas de microelectrodos de pipeta de punta fina .
- ↑ Brasero 1961 ; McHenry y guarnición 1969 ; Worden, Swazey y Adelman 1975 .
- ↑ Finkelstein GW (2013). Emil du Bois-Reymond : neurociencia, yo y sociedad en la Alemania del siglo XIX . Cambridge, Massachusetts. ISBN 9781461950325OCLC 864592470
{{cite book}}: CS1 mantenimiento: falta el editor de ubicación ( enlace ) - ↑ Olesko, Kathryn M. y Frederic L. Holmes. «Experimento, cuantificación y descubrimiento: las primeras investigaciones fisiológicas de Helmholtz, 1843-1850». En Hermann von Helmholtz y los fundamentos de la ciencia del siglo XIX , editado por David Cahan, pp. 50-108. Berkeley; Los Ángeles; Londres: Universidad de California, 1994.
- ↑ Bernstein 1912 .
- ↑ Baranauskas G, Martina M (enero de 2006). "Las corrientes de sodio se activan sin un retraso de tipo Hodgkin-Huxley en neuronas centrales de mamíferos" . The Journal of Neuroscience . 26 (2): 671– 84. doi : 10.1523/jneurosci.2283-05.2006 . PMC 6674426. PMID 16407565 .
- ↑ Hoppensteadt 1986 .
- ↑ Sato, S; Fukai, H; Nomura, T; Doi, S en Reeke et al. 2005 , Análisis de bifurcación de las ecuaciones de Hodgkin-Huxley , págs. 459–478. * FitzHugh, R en Schwann 1969 , Modelos matemáticos de excitación y propagación en nervios , págs. 12–16. * Guckenheimer y Holmes 1986 , págs. 12–16
- ↑ Nelson, ME; Rinzel, J en Bower & Beeman 1995 , The Hodgkin-Huxley Model , pp. 29–49. * Rinzel, J & Ermentrout, GB; en Koch & Segev 1989 , Analysis of Neural Excitability and Oscillations , pp. 135–169.
- ↑ Biswas A, Manivannan M, Srinivasan MA (2015). "Umbral de sensibilidad vibrotáctil: modelo de mecanotransducción estocástica no lineal del corpúsculo de Pacini" . IEEE Transactions on Haptics . 8 (1): 102–13 . Bibcode : 2015ITHap...8..102B . doi : 10.1109/TOH.2014.2369422 . PMID 25398183. S2CID 15326972 .
- ↑ McCulloch 1988 , págs. 19–39, 46–66, 72–141; Anderson y Rosenfeld 1988 , págs. 15–41.
- ↑ Getting, PA en Koch & Segev 1989 , Reconstrucción de redes neuronales pequeñas , pp. 171–194.
Artículos de revistas
- ↑ MacDonald PE, Rorsman P (febrero de 2006). "Oscilaciones, acoplamiento intercelular y secreción de insulina en células beta pancreáticas" . PLOS Biology . 4 (2): e49. doi : 10.1371/journal.pbio.0040049 . PMC 1363709. PMID 16464129 .

- 1 2 Barnett MW, Larkman PM (junio de 2007). " El potencial de acción" . Neurología práctica . 7 (3): 192– 7. PMID 17515599. Archivado del original el 8 de julio de 2011.
- 1 2 Varró, András; et al. (1 de julio de 2021). "Canales iónicos transmembrana cardíacos y potenciales de acción: fisiología celular y comportamiento arritmogénico" . Physiological Reviews . 101 (3): 1083– 1176. doi : 10.1152/physrev.00024.2019 . ISSN 0031-9333 . PMID 33118864 .
- ↑ Golding NL, Kath WL, Spruston N (diciembre de 2001). "Dicotomía de la retropropagación del potencial de acción en las dendritas de las neuronas piramidales CA1". Journal of Neurophysiology . 86 (6): 2998–3010 . doi : 10.1152/jn.2001.86.6.2998 . PMID 11731556. S2CID 2915815 .
- ^ Sasaki, T., Matsuki, N., Ikegaya, Y. 2011 Modulación del potencial de acción durante la conducción axonal Science 331 (6017), págs.
- ↑ Aur D, Connolly CI, Jog MS (noviembre de 2005). "Cálculo de la directividad de los picos con tetrodos". Journal of Neuroscience Methods . 149 (1): 57– 63. doi : 10.1016/j.jneumeth.2005.05.006 . PMID 15978667. S2CID 34131910 .
- ↑ Aur D., Jog, MS., 2010 Neuroelectrodinámica: Entendiendo el lenguaje cerebral, IOS Press, 2010. doi : 10.3233/978-1-60750-473-3-i
- ↑ Noble D (noviembre de 1960). "Acción cardíaca y potenciales marcapasos basados en las ecuaciones de Hodgkin-Huxley". Nature . 188 ( 4749): 495–7 . Bibcode : 1960Natur.188..495N . doi : 10.1038/188495b0 . PMID 13729365. S2CID 4147174 .
- 1 2 Goldman DE (septiembre de 1943). " Potencial, impedancia y rectificación en membranas" . The Journal of General Physiology . 27 (1): 37– 60. doi : 10.1085/jgp.27.1.37 . PMC 2142582. PMID 19873371 .
- 1 2 3 4 5 Hodgkin AL , Huxley AF, Katz B (abril de 1952). "Medición de las relaciones corriente-voltaje en la membrana del axón gigante de Loligo" . The Journal of Physiology . 116 (4): 424–48 . doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004716 . PMC 1392219. PMID 14946712 . * Hodgkin AL , Huxley AF (abril de 1952). "Corrientes transportadas por iones de sodio y potasio a través de la membrana del axón gigante de Loligo" . The Journal of Physiology . 116 (4): 449–72 . doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004717 . PMC 1392213. PMID 14946713 . * Hodgkin AL , Huxley AF (abril de 1952). "Los componentes de la conductancia de membrana en el axón gigante de Loligo" . The Journal of Physiology . 116 (4): 473–96 . doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004718 . PMC 1392209. PMID 14946714 . * Hodgkin AL , Huxley AF (abril de 1952). "El efecto dual del potencial de membrana sobre la conductancia de sodio en el axón gigante de Loligo" . The Journal of Physiology . 116 (4): 497–506 . doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004719 . PMC 1392212. PMID 14946715 . * Hodgkin AL , Huxley AF (agosto de 1952). "Una descripción cuantitativa de la corriente de membrana y su aplicación a la conducción y excitación en el nervio" . The Journal of Physiology . 117 (4): 500–44 . doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004764 . PMC 1392413. PMID 12991237 .
- ↑ Naundorf B, Wolf F, Volgushev M (abril de 2006). "Características únicas de la iniciación del potencial de acción en neuronas corticales" ( PDF) . Nature . 440 (7087): 1060–3 . Bibcode : 2006Natur.440.1060N . doi : 10.1038/nature04610 . PMID 16625198. S2CID 1328840. Archivado del original (PDF) el 20 de diciembre de 2018. Recuperado el 24 de septiembre de 2019 .
- ↑ Hodgkin AL (julio de 1937). " Evidencia de transmisión eléctrica en el nervio: Parte I" . The Journal of Physiology . 90 (2): 183– 210. doi : 10.1113/jphysiol.1937.sp003507 . PMC 1395060. PMID 16994885 . * Hodgkin AL (julio de 1937). " Evidencia de transmisión eléctrica en el nervio: Parte II" . The Journal of Physiology . 90 (2): 211– 32. doi : 10.1113/jphysiol.1937.sp003508 . PMC 1395062. PMID 16994886 .
- ↑ Zalc B (2006). "La adquisición de mielina: una historia de éxito". Señalización purinérgica en las interacciones neurona-glía . Simposios de la Fundación Novartis. Vol. 276. págs. 15-21 , discusión 21-5, 54-7 , 275-81 . doi : 10.1002/9780470032244.ch3 . ISBN 978-0-470-03224-4. PMID 16805421 .
{{cite book}}:|journal=ignorado ( ayuda ) - ↑ Poliak S, Peles E (diciembre de 2003). " La diferenciación local de los axones mielinizados en los nódulos de Ranvier". Nature Reviews. Neuroscience . 4 (12): 968– 80. doi : 10.1038/nrn1253 . PMID 14682359. S2CID 14720760 .
- ↑ Simons M, Trotter J (octubre de 2007). "Resumiendo: la biología celular de la mielinización". Current Opinion in Neurobiology . 17 (5): 533– 40. doi : 10.1016/j.conb.2007.08.003 . PMID 17923405. S2CID 45470194 .
- ↑ Xu K, Terakawa S (agosto de 1999). "Los nódulos de fenestración y el amplio espacio submielínico forman la base de la conducción de impulsos inusualmente rápida de los axones mielinizados del camarón" . The Journal of Experimental Biology . 202 (Pt 15): 1979–89 . Bibcode : 1999JExpB.202.1979X . doi : 10.1242/jeb.202.15.1979 . PMID 10395528 .
- 1 2 Hursh JB (1939). "Velocidad de conducción y diámetro de las fibras nerviosas". American Journal of Physiology . 127 : 131–39 . doi : 10.1152/ajplegacy.1939.127.1.131 .
- ↑ Lillie RS (marzo de 1925). " Factores que afectan la transmisión y la recuperación en el modelo pasivo del nervio de hierro" . The Journal of General Physiology . 7 (4): 473– 507. doi : 10.1085/jgp.7.4.473 . PMC 2140733. PMID 19872151 . Véase también Keynes y Aidley 1991 , pág. 78.
- ↑ Tasaki I (1939). "Transmisión electrosaltatoria del impulso nervioso y efecto de la narcosis sobre la fibra nerviosa". Am. J. Physiol . 127 : 211–27 . doi : 10.1152/ajplegacy.1939.127.2.211 .
- ^ Tasaki I, Takeuchi T (1941). "Der am Ranvierschen Knoten entstehende Aktionsstrom und seine Bedeutung für die Erregungsleitung". Pflügers Archiv für die gesamte Physiologie . 244 (6): 696– 711. doi : 10.1007/BF01755414 . S2CID 8628858 . * Tasaki I, Takeuchi T (1942). "Weitere Studien über den Aktionsstrom der markhaltigen Nervenfaser und über die elektrosaltatorische Übertragung des nerviosonimpulses". Pflügers Archiv für die gesamte Physiologie . 245 (5): 764– 82. doi : 10.1007/BF01755237 . S2CID 44315437 .
- ↑ Huxley AF , Stämpfli R (mayo de 1949). " Evidencia de conducción saltatoria en fibras nerviosas mielinizadas periféricas" . The Journal of Physiology . 108 (3): 315–39 . doi : 10.1113/jphysiol.1949.sp004335 . PMC 1392492. PMID 16991863 . * Huxley AF , Stampfli R (febrero de 1951). "Determinación directa del potencial de reposo de la membrana y del potencial de acción en fibras nerviosas mielinizadas individuales" . The Journal of Physiology . 112 ( 3–4 ): 476–95 . doi : 10.1113/jphysiol.1951.sp004545 . PMC 1393015. PMID 14825228 .
- ↑ Rushton WA (septiembre de 1951). " Una teoría de los efectos del tamaño de las fibras en el nervio medulado" . The Journal of Physiology . 115 (1): 101–22 . doi : 10.1113/jphysiol.1951.sp004655 . PMC 1392008. PMID 14889433 .
- 1 2 Hartline DK, Colman DR (enero de 2007). "Conducción rápida y la evolución de axones gigantes y fibras mielinizadas" . Current Biology . 17 (1): R29-35. Bibcode : 2007CBio...17R..29H . doi : 10.1016/j.cub.2006.11.042 . PMID 17208176. S2CID 10033356 .
- ↑ Miller RH, Mi S (noviembre de 2007). "Disecando la desmielinización". Nature Neuroscience . 10 (11): 1351– 4. doi : 10.1038/nn1995 . PMID 17965654. S2CID 12441377 .
- ↑ Kelvin WT (1855). "Sobre la teoría del telégrafo eléctrico". Actas de la Royal Society . 7 : 382–99 . doi : 10.1098/rspl.1854.0093 . S2CID 178547827 .
- ↑ Hodgkin AL , Rushton WA (diciembre de 1946). "Las constantes eléctricas de una fibra nerviosa de crustáceo" . Actas de la Real Sociedad de Medicina . 134 (873): 444–79 . Bibcode : 1946RSPSB.133..444H . doi : 10.1098/rspb.1946.0024 . PMID 20281590 .
- ↑ Süudhof TC (2008). «Liberación de neurotransmisores». Farmacología de la liberación de neurotransmisores . Manual de farmacología experimental. Vol. 184. págs. 1–21 . doi : 10.1007/978-3-540-74805-2_1 . ISBN 978-3-540-74804-5. PMID 18064409 .
- ↑ Rusakov DA (agosto de 2006). "Mecanismos dependientes de Ca2+ del control presináptico en las sinapsis centrales" . The Neuroscientist . 12 (4): 317–26 . doi : 10.1177/1073858405284672 . PMC 2684670. PMID 16840708 .
- ↑ Humeau Y, Doussau F, Grant NJ, Poulain B (mayo de 2000). "Cómo las neurotoxinas botulínica y tetánica bloquean la liberación de neurotransmisores". Biochimie . 82 (5): 427–46 . doi : 10.1016/S0300-9084(00)00216-9 . PMID 10865130 .
- ↑ Zoidl G, Dermietzel R (noviembre de 2002). "En busca de la sinapsis eléctrica: una mirada al futuro". Cell and Tissue Research . 310 (2): 137– 42. doi : 10.1007/s00441-002-0632-x . PMID 12397368. S2CID 22414506 .
- ↑ Brink PR, Cronin K, Ramanan SV (agosto de 1996). " Uniones comunicantes en células excitables". Journal of Bioenergetics and Biomembranes . 28 (4): 351–8 . doi : 10.1007/BF02110111 . PMID 8844332. S2CID 46371790 .
- ↑ Hirsch NP (julio de 2007). "Unión neuromuscular en la salud y la enfermedad" . British Journal of Anaesthesia . 99 (1): 132–8 . doi : 10.1093/bja/aem144 . PMID 17573397 .
- ↑ Hughes BW, Kusner LL, Kaminski HJ (abril de 2006). " Arquitectura molecular de la unión neuromuscular". Muscle & Nerve . 33 (4): 445–61 . doi : 10.1002/mus.20440 . PMID 16228970. S2CID 1888352 .
- 1 2 Newmark J (enero de 2007). "Agentes nerviosos". The Neurologist . 13 (1): 20– 32. doi : 10.1097/01.nrl.0000252923.04894.53 . PMID 17215724. S2CID 211234081 .
- ↑ Costa LG (abril de 2006). "Temas actuales en toxicología de organofosforados". Clinica Chimica Acta; Revista Internacional de Química Clínica . 366 ( 1–2 ): 1–13 . doi : 10.1016/j.cca.2005.10.008 . PMID 16337171 .
- 1 2 3 Kléber AG, Rudy Y (abril de 2004). "Mecanismos básicos de propagación del impulso cardíaco y arritmias asociadas". Physiological Reviews . 84 (2): 431– 88. doi : 10.1152/physrev.00025.2003 . PMID 15044680. S2CID 21823003 .
- ↑ Tamargo J, Caballero R, Delpón E (enero de 2004). "Enfoques farmacológicos en el tratamiento de la fibrilación auricular". Current Medicinal Chemistry . 11 (1): 13– 28. doi : 10.2174/0929867043456241 . PMID 14754423 .
- ^ Slayman CL, Long WS, Gradmann D (abril de 1976). ""Potenciales de acción" en Neurospora crassa, un hongo micelial". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes . 426 (4): 732– 44. doi : 10.1016/0005-2736(76)90138-3 . PMID 130926 .
- ↑ Mummert H, Gradmann D (diciembre de 1991). "Potenciales de acción en Acetabularia: medición y simulación de flujos dependientes de voltaje". The Journal of Membrane Biology . 124 (3): 265– 73. doi : 10.1007/BF01994359 . PMID 1664861. S2CID 22063907 .
- ↑ Gradmann D (2001). "Modelos para oscilaciones en plantas" . Aust. J. Plant Physiol . 28 (7): 577– 590. Bibcode : 2001FunPB..28..577G . doi : 10.1071/pp01017 .
- ↑ Beilby MJ (2007). Potencial de acción en carofitas . Revista Internacional de Citología. Vol. 257. pp. 43–82 . doi : 10.1016/S0074-7696(07)57002-6 . ISBN 978-0-12-373701-4. PMID 17280895 .
- ↑ Gradmann D, Hoffstadt J (noviembre de 1998). "Electroacoplamiento de transportadores de iones en plantas: interacción con concentraciones internas de iones". The Journal of Membrane Biology . 166 (1): 51– 9. doi : 10.1007/s002329900446 . PMID 9784585. S2CID 24190001 .
- ↑ Fromm J, Lautner S (marzo de 2007). "Señales eléctricas y su significado fisiológico en las plantas" . Plant, Cell & Environment . 30 (3): 249– 257. Bibcode : 2007PCEnv..30..249F . doi : 10.1111/j.1365-3040.2006.01614.x . PMID 17263772 .
- ↑ Leys SP, Mackie GO, Meech RW (mayo de 1999). "Conducción de impulsos en una esponja" . The Journal of Experimental Biology . 202 (Pt 9) (9): 1139– 50. Bibcode : 1999JExpB.202.1139L . doi : 10.1242/jeb.202.9.1139 . PMID 10101111 .
- ↑ Keynes RD (1989). "El papel de los axones gigantes en los estudios del impulso nervioso". BioEssays . 10 ( 2–3 ): 90–3 . doi : 10.1002/bies.950100213 . PMID 2541698 .
- ↑ Meunier C, Segev I (noviembre de 2002). "Haciendo de abogado del diablo: ¿es útil el modelo de Hodgkin-Huxley?". Trends in Neurosciences . 25 (11): 558– 63. doi : 10.1016/S0166-2236(02)02278-6 . PMID 12392930. S2CID 1355280 .
- ↑ Cole KS (1949). "Características eléctricas dinámicas de la membrana del axón del calamar". Arch. Sci. Physiol . 3 : 253–8 .
- ↑ Ling G, Gerard RW (diciembre de 1949). "El potencial de membrana normal de las fibras sartorias de la rana". Journal of Cellular and Comparative Physiology . 34 (3): 383– 96. doi : 10.1002/jcp.1030340304 . PMID 15410483 .
- ↑ Nastuk WL, Hodgkin A (1950). "La actividad eléctrica de fibras musculares individuales". Journal of Cellular and Comparative Physiology . 35 : 39–73 . doi : 10.1002/jcp.1030350105 .
- ↑ Brock LG, Coombs JS, Eccles JC (agosto de 1952). "El registro de potenciales de motoneuronas con un electrodo intracelular" . The Journal of Physiology . 117 (4): 431– 60. doi : 10.1113/jphysiol.1952.sp004759 . PMC 1392415. PMID 12991232 .
- ↑ Ross WN, Salzberg BM, Cohen LB, Davila HV (diciembre de 1974). "Un gran cambio en la absorción de colorante durante el potencial de acción" . Biophysical Journal . 14 (12): 983– 6. Bibcode : 1974BpJ....14..983R . doi : 10.1016/ S0006-3495 (74)85963-1 . PMC 1334592. PMID 4429774 . * Grynkiewicz G, Poenie M, Tsien RY (marzo de 1985). "Una nueva generación de indicadores de Ca2+ con propiedades de fluorescencia notablemente mejoradas" . The Journal of Biological Chemistry . 260 (6): 3440– 50. doi : 10.1016/S0021-9258(19)83641-4 . PMID 3838314 .
- ↑ Bu G, Adams H, Berbari EJ, Rubart M (marzo de 2009). "Repolarización uniforme del potencial de acción dentro del sarcolema de cardiomiocitos ventriculares in situ" . Biophysical Journal . 96 (6): 2532– 46. Bibcode : 2009BpJ....96.2532B . doi : 10.1016/j.bpj.2008.12.3896 . PMC 2907679. PMID 19289075 .
- ↑ Milligan JV, Edwards C (julio de 1965). "Algunos factores que afectan el curso temporal de la recuperación de la capacidad de contractura después de una contractura de potasio en el músculo estriado de la rana" . The Journal of General Physiology . 48 (6): 975–83 . doi : 10.1085/jgp.48.6.975 . PMC 2195447. PMID 5855511 . * Ritchie JM, Rogart RB (1977). "La unión de la saxitoxina y la tetrodotoxina al tejido excitable". Reviews of Physiology, Biochemistry and Pharmacology, Volumen 79. Vol. 79. págs. 1–50 . doi : 10.1007/BFb0037088 . ISBN 0-387-08326-X. PMID 335473 . * Keynes RD, Ritchie JM (agosto de 1984). "Sobre la unión de la saxitoxina marcada al axón gigante del calamar". Actas de la Royal Society de Londres. Serie B, Ciencias Biológicas . 222 (1227): 147– 53. Bibcode : 1984RSPSB.222..147K . doi : 10.1098/rspb.1984.0055 . PMID 6148754. S2CID 11465181 .
- ↑ Piccolino M (octubre de 1997). "Luigi Galvani y la electricidad animal: dos siglos después de la fundación de la electrofisiología". Trends in Neurosciences . 20 (10): 443– 8. doi : 10.1016/S0166-2236(97)01101-6 . PMID 9347609. S2CID 23394494 .
- ↑ Piccolino M (abril de 2000). "El bicentenario de la batería voltaica (1800-2000): el órgano eléctrico artificial". Trends in Neurosciences . 23 (4): 147– 51. doi : 10.1016/S0166-2236(99) 01544-1 . PMID 10717671. S2CID 393323 .
- ↑ Bernstein J. (1902). "Untersuchungen zur Thermodynamik der bioelektrischen Ströme" . Pflügers Archiv für die gesamte Physiologie . 92 ( 10– 12): 521– 562. doi : 10.1007/BF01790181 . S2CID 33229139 .
- ↑ Cole KS , Curtis HJ (mayo de 1939). "Impedancia eléctrica del axón gigante del calamar durante la actividad" . The Journal of General Physiology . 22 (5): 649–70 . doi : 10.1085/jgp.22.5.649 . PMC 2142006. PMID 19873125 .
- ↑ Lapicque L (1907). "Investigaciones cuantitativas sobre la excitación eléctrica de los nervios tratados como una polarización". J. Physiol. Patol. Gen. 9 : 620–635 .
- ↑ Hodgkin AL , Katz B (marzo de 1949). "El efecto de los iones de sodio en la actividad eléctrica del axón gigante del calamar" . The Journal of Physiology . 108 (1): 37–77 . Bibcode : 1949JPhsg.108...37H . doi : 10.1113/jphysiol.1949.sp004310 . PMC 1392331. PMID 18128147 .
- ↑ Neher E , Sakmann B (abril de 1976). "Corrientes de canal único registradas en la membrana de fibras musculares de rana denervadas". Nature . 260 (5554): 799– 802. Bibcode : 1976Natur.260..799N . doi : 10.1038/260799a0 . PMID 1083489 . S2CID 4204985 . * Hamill OP, Marty A, Neher E, Sakmann B, Sigworth FJ (agosto de 1981). "Técnicas mejoradas de patch-clamp para el registro de corriente de alta resolución de células y parches de membrana libres de células". Pflügers Archiv . 391 (2): 85– 100. doi : 10.1007/BF00656997 . PMID 6270629. S2CID 12014433 . * Neher E , Sakmann B (marzo de 1992). "La técnica de patch clamp". Scientific American . 266 (3): 44– 51. Bibcode : 1992SciAm.266c..44N . doi : 10.1038/scientificamerican0392-44 . PMID 1374932 .
- ↑ Yellen G (septiembre de 2002). "Los canales de potasio dependientes de voltaje y sus parientes". Nature . 419 (6902): 35– 42. Bibcode : 2002Natur.419...35Y . doi : 10.1038/nature00978 . PMID 12214225. S2CID 4420877 .
- ↑ Doyle DA, Morais Cabral J, Pfuetzner RA, Kuo A, Gulbis JM, Cohen SL, et al. (abril de 1998). "La estructura del canal de potasio: base molecular de la conducción y selectividad de K+". Science . 280 (5360): 69– 77. Bibcode : 1998Sci...280...69D . doi : 10.1126/science.280.5360.69 . PMID 9525859 . * Zhou Y, Morais-Cabral JH, Kaufman A, MacKinnon R (noviembre de 2001). "Química de la coordinación iónica y la hidratación revelada por un complejo canal K+-Fab con una resolución de 2,0 Å". Nature . 414 ( 6859): 43–8 . Bibcode : 2001Natur.414...43Z . doi : 10.1038/35102009 . PMID 11689936. S2CID 205022645 . * Jiang Y, Lee A, Chen J, Ruta V, Cadene M, Chait BT, MacKinnon R (mayo de 2003). "Estructura de rayos X de un canal de K+ dependiente de voltaje". Nature . 423 ( 6935): 33– 41. Bibcode : 2003Natur.423...33J . doi : 10.1038/nature01580 . PMID 12721618. S2CID 4347957 .
- ↑ Cha A, Snyder GE, Selvin PR , Bezanilla F (diciembre de 1999). "Movimiento a escala atómica de la región sensible al voltaje en un canal de potasio medido mediante espectroscopia" . Nature . 402 ( 6763): 809–13 . Bibcode : 1999Natur.402..809C . doi : 10.1038/45552 . PMID 10617201. S2CID 4353978 . * Glauner KS, Mannuzzu LM, Gandhi CS, Isacoff EY (diciembre de 1999). "Mapeo espectroscópico del movimiento del sensor de voltaje en el canal de potasio Shaker". Nature . 402 (6763): 813– 7. Bibcode : 1999Natur.402..813G . doi : 10.1038/45561 . PMID 10617202 . S2CID 4417476 . * Bezanilla F (abril de 2000). " El sensor de voltaje en los canales iónicos dependientes de voltaje". Physiological Reviews . 80 (2): 555– 92. doi : 10.1152/physrev.2000.80.2.555 . PMID 10747201. S2CID 18629998 .
- ↑ Catterall WA (febrero de 2001). "Una visión 3D de los canales de sodio" . Nature . 409 ( 6823): 988–9 , 991. Bibcode : 2001Natur.409..988C . doi : 10.1038/35059188 . PMID 11234048. S2CID 4371677 . * Sato C, Ueno Y, Asai K, Takahashi K, Sato M, Engel A, Fujiyoshi Y (febrero de 2001). "El canal de sodio sensible al voltaje es una molécula en forma de campana con varias cavidades". Nature . 409 ( 6823): 1047– 51. Bibcode : 2001Natur.409.1047S . doi : 10.1038/35059098 . PMID 11234014. S2CID 4430165 .
- ↑ Skou JC (febrero de 1957). "La influencia de algunos cationes en una adenosina trifosfatasa de nervios periféricos". Biochimica et Biophysica Acta . 23 (2): 394– 401. doi : 10.1016/0006-3002(57) 90343-8 . PMID 13412736. S2CID 32516710 .
- ↑ Hodgkin AL , Keynes RD (abril de 1955). " Transporte activo de cationes en axones gigantes de Sepia y Loligo" . The Journal of Physiology . 128 (1): 28– 60. doi : 10.1113/jphysiol.1955.sp005290 . PMC 1365754. PMID 14368574 .
- ↑ Caldwell PC, Hodgkin AL, Keynes RD, Shaw TL (julio de 1960). "Los efectos de la inyección de compuestos de fosfato 'ricos en energía' sobre el transporte activo de iones en los axones gigantes de Loligo" . The Journal of Physiology . 152 (3): 561– 90. doi : 10.1113/jphysiol.1960.sp006509 . PMC 1363339. PMID 13806926 .
- ↑ Caldwell PC, Keynes RD (junio de 1957). "La utilización de la energía del enlace fosfato para la extrusión de sodio de los axones gigantes". The Journal of Physiology . 137 (1): 12–3P. doi : 10.1113/jphysiol.1957.sp005830 . PMID 13439598. S2CID 222188054 .
- ^ Morth JP, Pedersen BP, Toustrup-Jensen MS, Sørensen TL, Petersen J, Andersen JP, et al. (Diciembre de 2007). "Estructura cristalina de la bomba de sodio-potasio". Naturaleza . 450 (7172): 1043– 9. Bibcode : 2007Natur.450.1043M . doi : 10.1038/naturaleza06419 . PMID 18075585 . S2CID 4344526 .
- ↑ Lee AG, East JM (junio de 2001). "Lo que la estructura de una bomba de calcio nos dice sobre su mecanismo" . The Biochemical Journal . 356 (Pt 3): 665–83 . doi : 10.1042/0264-6021:3560665 . PMC 1221895. PMID 11389676 .
- ↑
- Fitzhugh R (mayo de 1960). "Umbrales y mesetas en las ecuaciones nerviosas de Hodgkin-Huxley" . The Journal of General Physiology . 43 (5): 867– 96. doi : 10.1085/jgp.43.5.867 . PMC 2195039. PMID 13823315 . * Kepler TB, Abbott LF, Marder E (1992). "Reducción de modelos neuronales basados en conductancia". Biological Cybernetics . 66 (5): 381– 7. doi : 10.1007/BF00197717 . PMID 1562643 . S2CID 6789007 .
- ↑ Morris C, Lecar H (julio de 1981). "Oscilaciones de voltaje en la fibra muscular gigante del percebe" . Biophysical Journal . 35 (1): 193– 213. Bibcode : 1981BpJ....35..193M . doi : 10.1016/ S0006-3495 (81)84782-0 . PMC 1327511. PMID 7260316 .
- ↑ Fitzhugh R (julio de 1961). "Impulsos y estados fisiológicos en modelos teóricos de la membrana nerviosa" . Biophysical Journal . 1 (6): 445– 66. Bibcode : 1961BpJ.....1..445F . doi : 10.1016 / S0006-3495(61)86902-6 . PMC 1366333. PMID 19431309 . * Nagumo J, Arimoto S, Yoshizawa S (1962). "Una línea de transmisión de pulsos activa que simula un axón nervioso". Actas del IRE . 50 (10): 2061– 2070. Bibcode : 1962PIRE...50.2061N . doi : 10.1109/JRPROC.1962.288235 . S2CID 51648050 .
- ↑ Bonhoeffer KF (septiembre de 1948). " Activación del hierro pasivo como modelo para la excitación del nervio" . The Journal of General Physiology . 32 (1): 69– 91. doi : 10.1085/jgp.32.1.69 . PMC 2213747. PMID 18885679 . * Bonhoeffer KF (1953). "Modelle der Nervenerregung". Naturwissenschaften . 40 (11): 301– 311. Bibcode : 1953NW.....40..301B . doi : 10.1007/BF00632438 . S2CID 19149460 . * Van der Pol B (1926). "Sobre las oscilaciones de relajación". Revista Filosófica . 2 : 977–992 .* Van der Pol B , Van der Mark J (1928). "El latido cardíaco considerado como una oscilación de relajación y un modelo eléctrico del corazón". Philosophical Magazine . 6 : 763– 775. doi : 10.1080/14786441108564652 .* Van der Pol B , van der Mark J (1929). "El latido cardíaco considerado como una oscilación de relajación y un modelo eléctrico del corazón". Arch. Neerl. Physiol . 14 : 418– 443.
- ↑ Evans JW (1972). "Ecuaciones del axón nervioso. I. Aproximaciones lineales" . Indiana Univ. Math. J. 21 ( 9): 877– 885. doi : 10.1512/iumj.1972.21.21071 .* Evans JW, Feroe J (1977). "Teoría de la estabilidad local del impulso nervioso". Math. Biosci . 37 : 23–50 . doi : 10.1016/0025-5564(77)90076-1 .
- ↑ Keener JP (1983). "Circuitos analógicos para las ecuaciones de Van der Pol y FitzHugh-Nagumo". IEEE Transactions on Systems, Man, and Cybernetics . 13 (5): 1010– 1014. Bibcode : 1983ITSMC..13.1010K . doi : 10.1109/TSMC.1983.6313098 . S2CID 20077648 .
- ↑ Hooper SL (marzo de 2000). "Generadores de patrones centrales". Current Biology . 10 (5): R176– R179. Bibcode : 2000CBio...10.R176H . CiteSeerX 10.1.1.133.3378 . doi : 10.1016/S0960-9822(00)00367-5 . PMID 10713861. S2CID 11388348 .
Libros
- Anderson JA, Rosenfeld E, eds. (1988). Neurocomputing: Foundations of Research . Cambridge, Massachusetts: The MIT Press. ISBN 978-0-262-01097-9LCCN 87003022 . OCLC 15860311 .
- Bernstein J (1912). Elektrobiologie, die Lehre von den elektrischen Vorgängen im Organismus auf moderner Grundlage dargestellt [ Biología eléctrica, el estudio de los procesos eléctricos en el organismo representados de forma moderna ] . Braunschweig: Vieweg und Sohn. LCCN 12027986 . OCLC 11358569 .
- Bower JM, Beeman D (1995). El libro de GENESIS: Explorando modelos neuronales realistas con el Sistema General de Simulación Neuronal . Santa Clara, California: TELOS. ISBN 978-0-387-94019-9LCCN 94017624 . OCLC 30518469 .
- Brazier MA (1961). Historia de la actividad eléctrica del cerebro . Londres: Pitman. LCCN 62001407. OCLC 556863 .
- Bullock TH , Horridge GA (1965). Estructura y función en los sistemas nerviosos de los invertebrados . Una serie de libros de biología. San Francisco: WH Freeman. LCCN 65007965. OCLC 558128 .
- Bullock TH , Orkand R, Grinnell A (1977). Introducción al sistema nervioso . Una serie de libros de biología. San Francisco: WH Freeman. ISBN 978-0-7167-0030-2LCCN 76003735 . OCLC 2048177 .
- Field J, ed. (1959). Manual de fisiología: una presentación crítica y completa de conocimientos y conceptos fisiológicos: Sección 1: Neurofisiología . Vol. 1. Washington, DC: Sociedad Americana de Fisiología. LCCN 60004587. OCLC 830755894 .
- Ganong, WF (1991). Revisión de fisiología médica (15.ª ed.). Norwalk, Conn.: Appleton and Lange. ISBN 978-0-8385-8418-7. ISSN 0892-1253 . LCCN 87642343 . OCLC 23761261 .
{{cite book}}:|journal=ignorado ( ayuda ) - Guckenheimer J, Holmes P, eds. (1986). Oscilaciones no lineales, sistemas dinámicos y bifurcaciones de campos vectoriales . Ciencias matemáticas aplicadas. Vol. 42 (2.ª ed.). Nueva York: Springer Verlag. ISBN 978-0-387-90819-9OCLC 751129941
- Hoppensteadt FC (1986). Introducción a las matemáticas de las neuronas . Estudios de Cambridge en biología matemática. Vol. 6. Cambridge: Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-31574-6LCCN 85011013 . OCLC 12052275 .
- Junge D (1981). Excitación nerviosa y muscular (2.ª ed.). Sunderland, Mass.: Sinauer Associates. ISBN 978-0-87893-410-2LCCN 80018158 . OCLC 6486925 .
- Kettenmann H, Grantyn R, eds. (1992). Métodos electrofisiológicos prácticos: una guía para estudios in vitro en neurobiología de vertebrados . Nueva York: Wiley. ISBN 978-0-471-56200-9LCCN 92000179 . OCLC 25204689 .
- Keynes RD , Aidley DJ (1991). Nervio y músculo (2.ª ed.). Cambridge: Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-41042-7LCCN 90015167 . OCLC 25204483 .
- Koch C. , Segev I., eds. (1989). Métodos en modelado neuronal: De las sinapsis a las redes . Cambridge, Massachusetts: The MIT Press. ISBN 978-0-262-11133-1LCCN 88008279 . OCLC 18384545 .
- Lavallée M, Schanne OF, Hébert NC, eds. (1969). Microelectrodos de vidrio . Nueva York: Wiley. ISBN 978-0-471-51885-3. LCCN 68009252 . OCLC 686 .
- McCulloch WS (1988). Encarnaciones de la mente . Cambridge, Massachusetts: The MIT Press. ISBN 978-0-262-63114-3LCCN 88002987 . OCLC 237280 .
- McHenry LC, Garrison FH (1969). Historia de la neurología de Garrison . Springfield, Ill.: Charles C. Thomas. OCLC 429733931 .
- Silverthorn DU (2010). Fisiología humana: un enfoque integrado (5.ª ed.). San Francisco: Pearson. ISBN 978-0-321-55980-7LCCN 2008050369 . OCLC 268788623 .
- Spanswick RM, Lucas WJ, Dainty J, eds. (1980). Transporte de membranas vegetales: cuestiones conceptuales actuales . Avances en biología vegetal. Vol. 4. Ámsterdam: Elsevier Biomedical Press. ISBN 978-0-444-80192-0LCCN 79025719 . OCLC 5799924 .
- Purves D, Augustine GJ, Fitzpatrick D, Hall WC, Lamantia AS, McNamara JO, Williams SM (2001). «Liberación de neurotransmisores de vesículas sinápticas» . Neurociencia (2.ª ed.). Sunderland, MA: Sinauer Associates. ISBN 978-0-87893-742-4LCCN 00059496 . OCLC 806472664 .
- Purves D, Augustine GJ, Fitzpatrick D, Hall WC, Lamantia AS, McNamara JO, White LE (2008). Neurociencia (4.ª ed.). Sunderland, MA: Sinauer Associates. ISBN 978-0-87893-697-7LCCN 2007024950 . OCLC 144771764 .
- Reeke GN, Poznanski RR, Sporns O, Rosenberg JR, Lindsay KA, eds. (2005). Modelado en neurociencias: de sistemas biológicos a robótica neuromimética . Boca Raton, Fla.: Taylor & Francis. ISBN 978-0-415-32868-5. LCCN 2005298022 . OCLC 489024131 .
- Schmidt-Nielsen K (1997). Fisiología animal: adaptación y medio ambiente (5.ª ed.). Cambridge: Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-57098-5LCCN 96039295 . OCLC 35744403 .
- Schwann HP, ed. (1969). Ingeniería biológica . Serie electrónica interuniversitaria. Vol. 9. Nueva York: McGraw-Hill. ISBN 978-0-07-055734-5LCCN 68027513 . OCLC 51993 .
- Stevens CF (1966). Neurofisiología: Una introducción . Nueva York: John Wiley and Sons. ISBN 9780471824367LCCN 66015872 . OCLC 1175605 .
- Waxman SG, ed. (2007). Neurología molecular . Burlington, Mass.: Elsevier Academic Press. ISBN 978-0-12-369509-3LCCN 2008357317 . OCLC 154760295 .
- Worden FG, Swazey JP, Adelman G, eds. (1975). Las neurociencias, caminos del descubrimiento . Cambridge, Massachusetts: The MIT Press. ISBN 978-0-262-23072-8LCCN 75016379 . OCLC 1500233 .
Páginas web
- ↑ Fitzhugh R, Izhikevich E (2006). "Modelo FitzHugh-Nagumo" . Scholarpedia . 1 (9): 1349. Bibcode : 2006SchpJ...1.1349I . doi : 10.4249/scholarpedia.1349 .
- ↑ «Premio Nobel de Fisiología o Medicina 1963» (Comunicado de prensa). Real Academia Sueca de Ciencias. 1963. Archivado del original el 16 de julio de 2007. Consultado el 21 de febrero de 2010 .
- ↑ «Premio Nobel de Fisiología o Medicina 1991» (Comunicado de prensa). Real Academia Sueca de Ciencias. 1991. Archivado del original el 24 de marzo de 2010. Consultado el 21 de febrero de 2010 .
- ↑ «El Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 1906» (Comunicado de prensa). Real Academia Sueca de Ciencias. 1906. Archivado del original el 4 de diciembre de 2008. Consultado el 21 de febrero de 2010 .
- ↑ Warlow C (junio de 2007). "La reciente evolución de un canal iónico simbiótico en la familia de las leguminosas alteró la conductancia iónica y mejoró la funcionalidad en la señalización del calcio" . Neurología práctica . 7 (3). BMJ Publishing Group: 192–197 . Archivado del original el 14 de marzo de 2012. Recuperado el 23 de marzo de 2013 .
- ↑ «El Premio Nobel de Química de 1997» (Comunicado de prensa). Real Academia Sueca de Ciencias. 1997. Archivado del original el 23 de octubre de 2009. Consultado el 21 de febrero de 2010 .
Lecturas adicionales
- Aidley DJ, Stanfield PR (1996). Canales iónicos: Moléculas en acción . Cambridge: Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-49882-1.
- Bear MF, Connors BW, Paradiso MA (2001). Neurociencia: Explorando el cerebro . Baltimore: Lippincott. ISBN 0-7817-3944-6.
- Clay JR (mayo de 2005). "Revisión de la excitabilidad axonal" . Progress in Biophysics and Molecular Biology . 88 (1): 59– 90. doi : 10.1016/j.pbiomolbio.2003.12.004 . PMID 15561301 .
- Deutsch S, Micheli-Tzanakou E (1987). Sistemas Neuroeléctricos . Nueva York: Prensa de la Universidad de Nueva York. ISBN 0-8147-1782-9.
- Hille B (2001). Canales iónicos de membranas excitables (3.ª ed.). Sunderland, MA: Sinauer Associates. ISBN 978-0-87893-321-1.
- Johnston D, Wu SM (1995). Fundamentos de neurofisiología celular . Cambridge, Massachusetts: Bradford Book, The MIT Press. ISBN 0-262-10053-3.
- Kandel ER , Schwartz JH, Jessell TM (2000). Principios de la ciencia neuronal (4ª ed.). Nueva York: McGraw-Hill. ISBN 0-8385-7701-6.
- Miller C (1987). «Cómo funcionan las proteínas de los canales iónicos». En Kaczmarek LK, Levitan IB (eds.). Neuromodulación: El control bioquímico de la excitabilidad neuronal . Nueva York: Oxford University Press. pp. 39–63 . ISBN 978-0-19-504097-5.
- Nelson DL, Cox MM (2008). Principios de bioquímica de Lehninger (5.ª ed.). Nueva York: WH Freeman. ISBN 978-0-7167-7108-1.
Enlaces externos
- Flujo iónico en potenciales de acción en Blackwell Publishing
- Propagación del potencial de acción en axones mielinizados y no mielinizados en Blackwell Publishing
- Generación de potenciales de acción en células cardíacas y generación de potenciales de acción en células neuronales
- Potencial de membrana en reposo de Life: The Science of Biology , por WK Purves, D Sadava, GH Orians y HC Heller, 8.ª edición, Nueva York: WH Freeman, ISBN 978-0-7167-7671-0.
- Movimiento iónico y voltaje de Goldman para concentraciones iónicas arbitrarias en la Universidad de Arizona.
- Una caricatura que ilustra el potencial de acción
- propagación del potencial de acción
- Software de código abierto para simular potenciales de acción neuronales y cardíacos en SourceForge.net
- Introducción al potencial de acción , Neurociencia en línea (libro de texto electrónico de neurociencia de la Facultad de Medicina de la Universidad de Texas en Houston)
- Khan Academy: Potencial electrotónico y potencial de acción. Archivado el 2 de julio de 2014 en Wayback Machine.
- condensadores
- Codificación neuronal
- Electrofisiología
- Electroquímica
- Neurociencia computacional
- neurociencia celular
- Procesos celulares
- Biología de membranas
- Inteligencia vegetal
- potenciales de acción