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Estructura secundaria de los ácidos nucleicos

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Nucleic acid primary structureNucleic acid double helixStem-loopPseudoknotNucleic acid tertiary structureNucleic acid quaternary structure
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Imagen interactiva de la estructura de los ácidos nucleicos (primarios, secundarios, terciarios y cuaternarios) mediante hélices de ADN y ejemplos de la ribozima VS , la telomerasa y el nucleosoma . ( PDB : ADNA , 1BNA , 4OCB , 4R4V , 1YMO , 1EQZ )

La estructura secundaria de los ácidos nucleicos son las interacciones de apareamiento de bases dentro de un solo polímero de ácido nucleico o entre dos polímeros. Se puede representar como una lista de bases que se aparean en una molécula de ácido nucleico. [ 1 ] Las estructuras secundarias del ADN y el ARN biológicos tienden a ser diferentes: el ADN biológico existe mayormente como doble hélice con apareamiento de bases completo , mientras que el ARN biológico es monocatenario y a menudo forma interacciones de apareamiento de bases complejas e intrincadas debido a su mayor capacidad para formar enlaces de hidrógeno derivados del grupo hidroxilo adicional en el azúcar ribosa .

En un contexto no biológico, la estructura secundaria es una consideración vital en el diseño de estructuras de ácidos nucleicos para la nanotecnología del ADN y la computación del ADN , ya que el patrón de apareamiento de bases determina en última instancia la estructura general de las moléculas.

Conceptos fundamentales

Emparejamiento de bases

Arriba , un par de bases AT que muestra dos enlaces de hidrógeno intermoleculares; abajo , un par de bases GC que muestra tres enlaces de hidrógeno intermoleculares .

En biología molecular , dos nucleótidos en hebras de ADN o ARN complementarias opuestas , unidos mediante enlaces de hidrógeno, se denominan pares de bases (a menudo abreviados como pb). En el apareamiento de bases canónico de Watson-Crick, la adenina (A) forma un par de bases con la timina (T) y la guanina (G) forma uno con la citosina (C) en el ADN. En el ARN, la timina se reemplaza por uracilo (U). También se presentan patrones alternativos de enlaces de hidrógeno, como el par de bases tambaleante y el par de bases de Hoogsteen , particularmente en el ARN , dando lugar a estructuras terciarias complejas y funcionales . Es importante destacar que el apareamiento es el mecanismo mediante el cual los anticodones del ARN de transferencia reconocen los codones en las moléculas de ARN mensajero durante la traducción de proteínas . Algunas enzimas de unión al ADN o al ARN pueden reconocer patrones específicos de apareamiento de bases que identifican regiones reguladoras particulares de los genes. Los enlaces de hidrógeno son el mecanismo químico que subyace a las reglas de apareamiento de bases descritas anteriormente. La correspondencia geométrica adecuada entre los donantes y aceptores de enlaces de hidrógeno permite que solo los pares "correctos" se formen de forma estable. El ADN con alto contenido de GC es más estable que el ADN con bajo contenido de GC , pero, contrariamente a la creencia popular, los enlaces de hidrógeno no estabilizan el ADN de forma significativa y la estabilización se debe principalmente a las interacciones de apilamiento . [ 2 ]

Las nucleobases más grandes , adenina y guanina, pertenecen a una clase de estructuras químicas de doble anillo llamadas purinas ; las nucleobases más pequeñas, citosina y timina (y uracilo), pertenecen a una clase de estructuras químicas de anillo simple llamadas pirimidinas . Las purinas solo son complementarias con las pirimidinas: los pares pirimidina-pirimidina son energéticamente desfavorables porque las moléculas están demasiado separadas para que se establezca un enlace de hidrógeno; los pares purina-purina son energéticamente desfavorables porque las moléculas están demasiado cerca, lo que lleva a la repulsión por superposición. Los únicos otros pares posibles son GT y AC; estos pares son desajustes porque el patrón de donadores y aceptores de hidrógeno no se corresponde. El par de bases tambaleante GU , con dos enlaces de hidrógeno, aparece con bastante frecuencia en el ARN .

Apilamiento de bases

La estabilidad de una hélice no solo proviene de los enlaces de hidrógeno entre las bases, sino también de la interacción de apilamiento entre los anillos aromáticos de las bases, especialmente cuando los anillos son paralelos entre sí. En una doble hélice ordinaria, las cuatro bases vecinas de dos cadenas pueden tener estos tipos de estabilización por apilamiento: [ 3 ]

  • El apilamiento intracadena se produce entre las dos bases vecinas de la misma cadena, como los dos lados más cortos de un rectángulo (los pares de bases son los lados "más largos").
  • El apilamiento entre hebras se produce entre dos bases vecinas de hebras diferentes, como las diagonales de un rectángulo.

Debido al apilamiento de bases, las descripciones de por qué y cómo se pliega el ARN —lo cual es fundamental para predecir las formas en que se pliega— suelen venir en fragmentos denominados de "vecino más cercano" para tener en cuenta tanto el apilamiento como el emparejamiento de bases. [ 3 ]

El apareamiento y el apilamiento de bases no solo afectan la estructura secundaria, sino que también pueden ocurrir en elementos simples como hélices y bucles, lo que los incluye dentro del ámbito de la estructura terciaria de los ácidos nucleicos . El apilamiento coaxial se produce cuando las bases de dos hélices diferentes se apilan juntas. Esto se observa en la estructura del ARNt . [ 4 ] [ 5 ]

Hibridación de ácidos nucleicos

La hibridación es el proceso por el cual los pares de bases complementarias se unen para formar una doble hélice . La fusión es el proceso por el cual se rompen las interacciones entre las hebras de la doble hélice, separando las dos hebras de ácido nucleico. Estos enlaces son débiles y se separan fácilmente mediante calentamiento suave, enzimas o fuerza física. La fusión ocurre preferentemente en ciertos puntos del ácido nucleico. [ 6 ] Las secuencias ricas en T y A se funden más fácilmente que las regiones ricas en C y G , ya que los dos enlaces de hidrógeno son más débiles que tres. Ciertos pasos de bases también son susceptibles a la fusión del ADN, en particular los pasos de bases TA y TG , ya que el apilamiento es más débil. [ 7 ] Estas características mecánicas se reflejan en el uso de secuencias como TATAA al comienzo de muchos genes para ayudar a la ARN polimerasa a fundir el ADN para la transcripción.

La separación de hebras mediante calentamiento suave, como se usa en la PCR , es sencilla siempre que las moléculas tengan menos de unos 10 000 pares de bases (10 kilobases o 10 kbp). El entrelazamiento de las hebras de ADN dificulta la separación de segmentos largos. La célula evita este problema permitiendo que sus enzimas de desnaturalización del ADN ( helicasas ) trabajen simultáneamente con las topoisomerasas , que pueden escindir químicamente el esqueleto de fosfato de una de las hebras para que pueda girar alrededor de la otra. Las helicasas desenrollan las hebras para facilitar el avance de enzimas de lectura de secuencias como la ADN polimerasa .

Representación

La forma más básica de describir la estructura secundaria de un ARN es mediante la notación de puntos y corchetes. Las bases no apareadas se marcan con puntos; las bases apareadas, con pares de corchetes. En una estructura sin pseudonudos, esto da como resultado una pila ordenada de corchetes equilibrados. Los pseudonudos pueden representarse como diferentes tipos de corchetes. Cada carácter de la cadena de puntos y corchetes describe una base, por lo que debe tener la misma longitud que el ácido nucleico. [ 8 ]

Otra forma de representar una única estructura como una cadena del mismo ancho que la secuencia de ácido nucleico se llama BEAR. [ 9 ]

El emparejamiento de bases también puede visualizarse bidimensionalmente como un diagrama de puntos de matriz cuadrada (en visualización de datos general, esto es muy similar a un mapa de calor bidimensional ). Con una sola estructura, los puntos simplemente tienen dos valores y representan el emparejamiento. La ventaja de los diagramas de puntos radica en su capacidad para representar un conjunto de estructuras, donde la magnitud de los puntos corresponde a alguna propiedad del par de bases, como la confianza, la fuerza o la frecuencia en el conjunto. [ 10 ]

Motivos de estructura secundaria

Las principales estructuras helicoidales de los ácidos nucleicos (formas A, B y Z)

La estructura secundaria de los ácidos nucleicos se divide generalmente en hélices (pares de bases contiguos; "tallos") y diversos tipos de bucles (nucleótidos no apareados rodeados por hélices). Con frecuencia, estos elementos, o combinaciones de ellos, se clasifican en categorías adicionales, como tetrabucles , pseudonudos y bucles de tallo . Los enfoques topológicos pueden utilizarse para categorizar y comparar estructuras complejas que surgen de la combinación de estos elementos en diversas disposiciones.

Doble hélice

La doble hélice es una importante estructura terciaria en las moléculas de ácido nucleico, íntimamente ligada a la estructura secundaria de la molécula. Una doble hélice se forma mediante regiones compuestas por muchos pares de bases consecutivos.

La doble hélice del ácido nucleico es un polímero espiral, generalmente dextrógiro, que contiene dos cadenas de nucleótidos que se emparejan entre sí. Una sola vuelta de la hélice constituye aproximadamente diez nucleótidos y contiene un surco mayor y un surco menor, siendo el surco mayor más ancho que el surco menor. [ 11 ] Dada la diferencia en los anchos del surco mayor y el surco menor, muchas proteínas que se unen al ADN lo hacen a través del surco mayor, que es más ancho. [ 12 ] Son posibles muchas formas de doble hélice; para el ADN, las tres formas biológicamente relevantes son el ADN-A , el ADN-B y el ADN-Z , mientras que las dobles hélices de ARN tienen estructuras similares a la forma A del ADN.

Estructuras de tallo-bucle

Una estructura secundaria de bucle de tallo de ARN

La estructura secundaria de las moléculas de ácido nucleico a menudo se puede descomponer de forma única en tallos y bucles. La estructura de tallo-bucle (también conocida como "horquilla"), en la que una hélice con pares de bases termina en un bucle corto sin pares, es extremadamente común y constituye un bloque de construcción para motivos estructurales más grandes, como las estructuras de trébol, que son uniones de cuatro hélices como las que se encuentran en el ARN de transferencia . Los bucles internos (una serie corta de bases sin pares en una hélice con pares más larga) y las protuberancias (regiones en las que una hebra de una hélice tiene bases insertadas "adicionales" sin contrapartes en la hebra opuesta) también son frecuentes.

Existen numerosos elementos de estructura secundaria de importancia funcional para los ARN biológicos; algunos ejemplos conocidos son los bucles de tallo terminadores independientes de Rho y la estructura de trébol del ARNt . Se están llevando a cabo investigaciones activas para determinar la estructura secundaria de las moléculas de ARN, utilizando enfoques que incluyen métodos tanto experimentales como computacionales (véase también la Lista de software de predicción de la estructura del ARN ).

Pseudonudos

Una estructura de pseudonudo de ARN . Por ejemplo, el componente de ARN de la telomerasa humana . [ 13 ]

Un pseudonudo es una estructura secundaria de ácido nucleico que contiene al menos dos estructuras de tallo-bucle en las que la mitad de un tallo se intercala entre las dos mitades de otro tallo. Los pseudonudos se pliegan en conformaciones tridimensionales con forma de nudo, pero no son verdaderos nudos topológicos . El apareamiento de bases en los pseudonudos no está bien anidado; es decir, se producen pares de bases que se "superponen" entre sí en la posición de la secuencia. Esto hace que la presencia de pseudonudos generales en secuencias de ácidos nucleicos sea imposible de predecir mediante el método estándar de programación dinámica , que utiliza un sistema de puntuación recursivo para identificar tallos apareados y, por consiguiente, no puede detectar pares de bases no anidados con algoritmos comunes. Sin embargo, se pueden predecir subclases limitadas de pseudonudos utilizando programas dinámicos modificados. [ 14 ] Las técnicas más recientes de predicción de estructuras, como las gramáticas estocásticas libres de contexto, tampoco pueden considerar los pseudonudos.

Los pseudonudos pueden formar una variedad de estructuras con actividad catalítica [ 15 ] y varios procesos biológicos importantes dependen de moléculas de ARN que forman pseudonudos. Por ejemplo, el componente de ARN de la telomerasa humana contiene un pseudonudo que es crítico para su actividad. [ 13 ] La ribozima del virus de la hepatitis delta es un ejemplo bien conocido de un ARN catalítico con un pseudonudo en su sitio activo. [ 16 ] [ 17 ] El intrón del grupo I es otro ejemplo de ARN catalítico con múltiples pseudonudos, como P3 y P7 en el dominio catalítico, y pseudonudos auxiliares específicos de subclase que proporcionan soporte estructural adicional. [ 18 ] [ 19 ] Aunque el ADN también puede formar pseudonudos, generalmente no están presentes en condiciones fisiológicas estándar .

Predicción de la estructura secundaria

La mayoría de los métodos para la predicción de la estructura secundaria de los ácidos nucleicos se basan en un modelo termodinámico de vecinos más cercanos. [ 20 ] [ 21 ] Un método común para determinar las estructuras más probables dada una secuencia de nucleótidos utiliza un algoritmo de programación dinámica que busca encontrar estructuras con baja energía libre. [ 22 ] Los algoritmos de programación dinámica a menudo prohíben los pseudonudos u otros casos en los que los pares de bases no están completamente anidados, ya que considerar estas estructuras resulta computacionalmente muy costoso incluso para moléculas de ácidos nucleicos pequeñas. Otros métodos, como las gramáticas estocásticas libres de contexto, también pueden utilizarse para predecir la estructura secundaria de los ácidos nucleicos.

Para muchas moléculas de ARN, la estructura secundaria es fundamental para su correcto funcionamiento , a menudo incluso más que la secuencia en sí. Este hecho facilita el análisis del ARN no codificante, a veces denominado "genes de ARN". Una aplicación de la bioinformática utiliza las estructuras secundarias de ARN predichas para buscar en un genoma formas de ARN no codificantes pero funcionales. Por ejemplo, los microARN presentan estructuras canónicas de tallo-bucle largas interrumpidas por pequeños bucles internos.

La estructura secundaria del ARN interviene en el empalme del ARN en ciertas especies. En humanos y otros tetrápodos, se ha demostrado que, sin la proteína U2AF2 , el proceso de empalme se inhibe. Sin embargo, en el pez cebra y otros teleósteos , el proceso de empalme del ARN puede ocurrir en ciertos genes incluso en ausencia de U2AF2. Esto podría deberse a que el 10 % de los genes del pez cebra presentan pares de bases TG y AC alternados en los sitios de empalme 3' (3'ss) y 5' (5'ss) respectivamente en cada intrón, lo que altera la estructura secundaria del ARN. Esto sugiere que la estructura secundaria del ARN puede influir en el empalme, potencialmente sin la necesidad de proteínas como la U2AF2, que se consideraban esenciales para que este proceso ocurriera. [ 23 ]

Determinación de la estructura secundaria

La estructura secundaria del ARN se puede determinar a partir de las coordenadas atómicas (estructura terciaria) obtenidas mediante cristalografía de rayos X , que a menudo se depositan en el Protein Data Bank . Los métodos actuales incluyen 3DNA/DSSR [ 24 ] y MC-annotate [ 25 ] .

Véase también

Referencias

  1. Dirks, Robert M.; Lin, Milo; Winfree, Erik y Pierce, Niles A. (2004). "Paradigmas para el diseño computacional de ácidos nucleicos" . Nucleic Acids Research . 32 (4): 1392– 1403. doi : 10.1093/nar/gkh291 . PMC 390280. PMID 14990744 .  
  2. Yakovchuk, Peter; Protozanova, Ekaterina; Frank-Kamenetskii, Maxim D. (2006). "Contribuciones del apilamiento y apareamiento de bases a la estabilidad térmica de la doble hélice del ADN" . Nucleic Acids Research . 34 (2): 564– 574. doi : 10.1093/nar/gkj454 . PMC 1360284. PMID 16449200 .  
  3. 1 2 Hopfinger, MC; Kirkpatrick, CC; Znosko, BM (18 de septiembre de 2020). "Predicciones y análisis de parámetros de vecinos más cercanos de ARN para nucleótidos modificados" . Nucleic Acids Research . 48 (16): 8901– ​​8913. doi : 10.1093/nar/gkaa654 . PMC 7498315. PMID 32810273 .  
  4. "Douglas H. Turner" . Reglas de Turner . Departamento de Química, Universidad de Rochester.
  5. "Base de datos del vecino más cercano - Parámetros de Turner 2004, apilamiento coaxial" . rna.urmc.rochester.edu .
  6. Breslauer KJ, Frank R, Blöcker H, Marky LA (1986). "Predicción de la estabilidad del dúplex de ADN a partir de la secuencia de bases" . PNAS . 83 ( 11): 3746– 3750. Bibcode : 1986PNAS...83.3746B . doi : 10.1073/pnas.83.11.3746 . PMC 323600. PMID 3459152 .  
  7. Richard Owczarzy (28 de agosto de 2008). "Temperatura de fusión del ADN: ¿cómo calcularla?" . Biofísica del ADN de alto rendimiento . owczarzy.net. Archivado del original el 30 de abril de 2015. Consultado el 2 de octubre de 2008 .
  8. Antczak, M; Popenda, M; Zok, T; Zurkowski, M; Adamiak, RW; Szachniuk, M (15 de abril de 2018). " Nuevos algoritmos para representar estructuras de ARN pseudonudas complejas en notación de puntos y corchetes" . Bioinformatics . 34 (8): 1304– 1312. doi : 10.1093/bioinformatics/btx783 . PMC 5905660. PMID 29236971 .  
  9. Mattei, E.; Ausiello, G.; Ferrè, F.; Helmer-Citterich, M. (2014). "Un nuevo enfoque para representar y comparar estructuras secundarias de ARN" . Nucleic Acids Research . 42 (10): 6146– 6157. doi : 10.1093/ nar /gku283 . PMC 4041456. PMID 24753415 .  
  10. Churkin, Alexander; Barash, Danny (2013). "Gráficos de puntos de ARN: una representación de imágenes para el análisis y manipulación de la estructura secundaria del ARN" . WIREs RNA . 4 (2): 205– 216. doi : 10.1002/wrna.1154 . PMID 23386427 . 
  11. Alberts; et al. (1994). La biología molecular de la célula . Nueva York: Garland Science. ISBN  978-0-8153-4105-5.
  12. ^ Pabo C, Sauer R (1984). "Reconocimiento de proteína-ADN". Annu Rev Bioquímica . 53 : 293– 321. doi : 10.1146/annurev.bi.53.070184.001453 . PMID 6236744 . 
  13. 1 2 Chen JL, Greider CW (2005). "Análisis funcional de la estructura del pseudonudo en el ARN de la telomerasa humana" . Proc Natl Acad Sci USA . 102 (23): 8080– 5. Bibcode : 2005PNAS..102.8080C . doi : 10.1073/pnas.0502259102 . PMC 1149427. PMID 15849264 .  
  14. Rivas E, Eddy SR (1999). "Un algoritmo de programación dinámica para la predicción de la estructura del ARN incluyendo pseudonudos". J Mol Biol . 285 (5): 2053– 2068. arXiv : physics/9807048 . doi : 10.1006/jmbi.1998.2436 . PMID 9925784 . S2CID 2228845 .  
  15. Staple, David W.; Butcher, Samuel E. (2005-06-14). "Pseudonudos: estructuras de ARN con funciones diversas" . PLOS Biol . 3 (6) e213. doi : 10.1371/journal.pbio.0030213 . ISSN 1545-7885 . PMC 1149493. PMID 15941360 .   
  16. Doudna, Jennifer A.; Ferré-D'Amaré, Adrian R.; Zhou, Kaihong (octubre de 1998). "Estructura cristalina de una ribozima del virus de la hepatitis delta". Nature . 395 ( 6702): 567– 574. Bibcode : 1998Natur.395..567F . doi : 10.1038/26912 . PMID 9783582. S2CID 4359811 .  
  17. Lai, Michael MC (1995-06-01). "La biología molecular del virus de la hepatitis delta". Annual Review of Biochemistry . 64 (1): 259– 286. doi : 10.1146/annurev.bi.64.070195.001355 . ISSN 0066-4154 . PMID 7574482 .  
  18. Vicens, Quentin; Cech, Thomas R. (13 de diciembre de 2005). "Arquitectura a nivel atómico de los intrones del grupo I revelada". Trends in Biochemical Sciences . 31 (1): 41– 51. doi : 10.1016/j.tibs.2005.11.008 . ISSN 0968-0004 . PMID 16356725 .  
  19. Liu, Tianshuo; Xu, Ling; Chung, Kevin; Sisto, Luke J.; Hwang, Jimin; Zhang, Chengxin; Van Zandt, Michael C.; Pyle, Anna Marie (2025-05-13). "Perspectivas moleculares sobre el reconocimiento de novo de moléculas pequeñas por una estructura de ARN intrónico" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 122 (19) e2502425122. Bibcode : 2025PNAS..12202425L . doi : 10.1073/pnas.2502425122 . ISSN 0027-8424 . PMC 12088405. PMID 40339124 .   
  20. Xia T, SantaLucia J Jr, Burkard ME, Kierzek R, Schroeder SJ, Jiao X, Cox C, Turner DH (octubre de 1998). "Parámetros termodinámicos para un modelo de vecinos más cercanos ampliado para la formación de dúplex de ARN con pares de bases de Watson-Crick". Biochemistry . 37 (42): 14719– 35. CiteSeerX 10.1.1.579.6653 . doi : 10.1021/bi9809425 . PMID 9778347 .  
  21. Mathews DH, Disney MD, Childs JL, Schroeder SJ, Zuker M, Turner DH (mayo de 2004). "Incorporación de restricciones de modificación química en un algoritmo de programación dinámica para la predicción de la estructura secundaria del ARN" . PNAS . 101 ( 19): 7287–92 . Bibcode : 2004PNAS..101.7287M . doi : 10.1073/pnas.0401799101 . PMC 409911. PMID 15123812 .  
  22. Zuker, M. (1989-04-07). "Sobre la búsqueda de todos los plegamientos subóptimos de una molécula de ARN". Science . 244 (4900): 48– 52. Bibcode : 1989Sci...244...48Z . doi : 10.1126/science.2468181 . ISSN 0036-8075 . PMID 2468181 .  
  23. Lin, Chien-Ling; Taggart, Allison J.; Lim, Kian Huat; Cygan, Kamil J.; Ferraris, Luciana; Creton, Robert; Huang, Yen-Tsung; Fairbrother, William G. (13 de noviembre de 2015). "La estructura del ARN reemplaza la necesidad de U2AF2 en el empalme" . Genome Research . 26 (1): 12– 23. doi : 10.1101/gr.181008.114 . PMC 4691745. PMID 26566657 .  
  24. Lu, XJ; Bussemaker, HJ; Olson, WK (2 de diciembre de 2015). "DSSR: una herramienta de software integrada para diseccionar la estructura espacial del ARN" . Nucleic Acids Research . 43 (21): e142. doi : 10.1093/nar/gkv716 . PMC 4666379. PMID 26184874 .  
  25. "MC-Annotate" . www-lbit.iro.umontreal.ca .
  • MDDNA: Bioinformática estructural del ADN
  • Abalone : ​​software comercial para modelado de ADN.
  • DNAlive: una interfaz web para calcular las propiedades físicas del ADN . También permite la vinculación de los resultados con el navegador genómico UCSC y la dinámica del ADN.