La modificación transcripcional o cotranscripcional es un conjunto de procesos biológicos comunes a la mayoría de las células eucariotas mediante los cuales un transcrito primario de ARN se altera químicamente después de la transcripción de un gen para producir una molécula de ARN madura y funcional que luego puede salir del núcleo y realizar diversas funciones en la célula. [ 1 ] Existen muchos tipos de modificaciones postranscripcionales que se logran a través de una clase diversa de mecanismos moleculares.
Un ejemplo es la conversión de los transcritos precursores de ARN mensajero en ARN mensajero maduro, que posteriormente puede traducirse en proteína . Este proceso incluye tres pasos principales que modifican significativamente la estructura química de la molécula de ARN: la adición de una caperuza 5' , la adición de una cola poliadenilada 3' y el empalme del ARN . Este procesamiento es vital para la correcta traducción de los genomas eucariotas, ya que el ARNm precursor inicial producido por la transcripción suele contener tanto exones (secuencias codificantes) como intrones (secuencias no codificantes); el empalme elimina los intrones y une directamente los exones, mientras que la caperuza y la cola facilitan el transporte del ARNm a un ribosoma y lo protegen de la degradación molecular. [ 2 ]
También pueden producirse modificaciones postranscripcionales durante el procesamiento de otros transcritos que, en última instancia, se convierten en ARN de transferencia , ARN ribosómico o cualquier otro tipo de ARN utilizado por la célula.
Procesamiento del ARNm
Procesamiento de 5 minutos
Limitación
La modificación del extremo 5' del pre-ARNm implica la adición de 7-metilguanosina (m7G ) al extremo 5'. Para ello, es necesario eliminar el fosfato terminal 5', lo cual se realiza con la ayuda de la enzima ARN trifosfatasa . La enzima guanosiltransferasa cataliza la reacción, que produce el extremo 5' difosfato . Este extremo 5' difosfato ataca el átomo de fósforo alfa de una molécula de GTP para añadir el residuo de guanina en un enlace trifosfato 5'5'. La enzima (guanina- N7 - )-metiltransferasa ("cap MTasa") transfiere un grupo metilo de la S-adenosilmetionina al anillo de guanina. [ 4 ] Este tipo de cap, con solo la (m7G ) en su posición, se denomina estructura cap 0. La ribosa del nucleótido adyacente también puede metilarse para dar una cap 1. La metilación de los nucleótidos corriente abajo de la molécula de ARN produce estructuras cap 2, cap 3 y así sucesivamente. En estos casos, los grupos metilo se agregan a los grupos 2' OH del azúcar ribosa. La cap protege el extremo 5' del transcrito primario de ARN del ataque de las ribonucleasas que tienen especificidad para los enlaces fosfodiéster 3'5' . [ 5 ] . Cabe señalar que en plantas y algunos otros eucariotas, el dinucleótido de nicotinamida y adenina también se ha identificado como una cap en plantas, humanos y levaduras, [ 6 ] y los científicos proponen que este puede ser un mecanismo para regular la expresión génica a través de metabolitos.
Procesamiento de 3 minutos
Escisión y poliadenilación
El procesamiento del pre-ARNm en el extremo 3' de la molécula de ARN implica la escisión de dicho extremo y la posterior adición de aproximadamente 250 residuos de adenina para formar una cola de poli(A) . Las reacciones de escisión y adenilación ocurren principalmente si una secuencia señal de poliadenilación (5'-AAUAAA-3') se encuentra cerca del extremo 3' de la molécula de pre-ARNm, seguida de otra secuencia, generalmente (5'-CA-3') , que constituye el sitio de escisión. Una secuencia rica en GU también suele estar presente más adelante en la molécula de pre-ARNm. Más recientemente, se ha demostrado que secuencias señal alternativas, como UGUA, situadas aguas arriba del sitio de escisión, también pueden dirigir la escisión y la poliadenilación en ausencia de la señal AAUAAA. Estas dos señales no son mutuamente independientes y a menudo coexisten. Tras la síntesis de los elementos de la secuencia, varias proteínas multisubunitarias se transfieren a la molécula de ARN. La transferencia de estas proteínas de unión específicas de secuencia, factor de especificidad de escisión y poliadenilación (CPSF), factor de escisión I (CF I) y factor de estimulación de escisión (CStF), ocurre desde la ARN polimerasa II . Los tres factores se unen a los elementos de secuencia. La señal AAUAAA es unida directamente por CPSF. Para los sitios de procesamiento dependientes de UGUA, la unión del complejo multiproteico la realiza el factor de escisión I (CF I). El complejo proteico resultante formado contiene factores de escisión adicionales y la enzima poliadenilato polimerasa (PAP). Este complejo escinde el ARN entre la secuencia de poliadenilación y la secuencia rica en GU en el sitio de escisión marcado por las secuencias (5'-CA-3'). La poli(A) polimerasa luego agrega aproximadamente 200 unidades de adenina al nuevo extremo 3' de la molécula de ARN utilizando ATP como precursor. A medida que se sintetiza la cola de poli(A), esta se une a múltiples copias de la proteína de unión a poli(A) , lo que protege el extremo 3' de la digestión por ribonucleasas mediante enzimas como el complejo CCR4-Not . [ 5 ]
Empalme de intrones
El empalme de ARN es el proceso por el cual los intrones , regiones de ARN que no codifican proteínas, se eliminan del pre-ARNm y los exones restantes se conectan para reformar una única molécula continua. Los exones son secciones de ARNm que se "expresan" o se traducen en una proteína. Son las porciones codificantes de una molécula de ARNm. [ 7 ] Aunque la mayor parte del empalme de ARN ocurre después de la síntesis completa y la adición de la caperuza del extremo del pre-ARNm, los transcritos con muchos exones pueden empalmarse cotranscripcionalmente. [ 8 ] La reacción de empalme es catalizada por un gran complejo proteico llamado espliceosoma, ensamblado a partir de proteínas y pequeñas moléculas de ARN nuclear que reconocen los sitios de empalme en la secuencia del pre-ARNm. Muchos pre-ARNm, incluidos los que codifican anticuerpos , pueden empalmarse de múltiples maneras para producir diferentes ARNm maduros que codifican diferentes secuencias de proteínas . Este proceso se conoce como empalme alternativo y permite la producción de una gran variedad de proteínas a partir de una cantidad limitada de ADN.
Procesamiento del ARNm de histonas
Las histonas H2A, H2B, H3 y H4 forman el núcleo de un nucleosoma y, por lo tanto, se denominan histonas centrales . El procesamiento de las histonas centrales se realiza de manera diferente porque el ARNm de histonas típico carece de varias características de otros ARNm eucariotas, como la cola de poli(A) y los intrones. Por lo tanto, estos ARNm no sufren empalme y su procesamiento en el extremo 3' se realiza independientemente de la mayoría de los factores de escisión y poliadenilación. Los ARNm de histonas centrales tienen una estructura especial de tallo-bucle en el extremo 3' que es reconocida por una proteína de unión a tallo-bucle y una secuencia corriente abajo, llamada elemento corriente abajo de histona (HDE), que recluta el ARNsn U7 . El factor de especificidad de escisión y poliadenilación 73 corta el ARNm entre el tallo-bucle y el HDE [ 9 ].
Sin embargo, las variantes de histonas, como H2A.Z o H3.3, tienen intrones y se procesan como ARNm normales, incluyendo el empalme y la poliadenilación. [ 9 ]
Véase también
Referencias
- ↑ Kiss T (julio de 2001). "Modificación postranscripcional de ARN celulares guiada por ARN nucleolar pequeño" . The EMBO Journal . 20 (14): 3617–22 . doi : 10.1093/emboj/20.14.3617 . PMC 125535. PMID 11447102 .
- ^ Berg, Tymoczko y Stryer 2007 , pág. Error 836 de harvnb: sin destino: CITEREFBergTymoczkoStryer2008 ( ayuda )
- 1 2 Shafee, Thomas; Lowe, Rohan (2017). "Estructura genética eucariota y procariota" . WikiJournal of Medicine . 4 (1). doi : 10.15347/wjm/2017.002 . ISSN 2002-4436 .
- ↑ Yamada-Okabe T, Mio T, Kashima Y, Matsui M, Arisawa M, Yamada-Okabe H (noviembre de 1999). "El gen de Candida albicans para la metiltransferasa de ARNm 5-cap: identificación de residuos adicionales esenciales para la catálisis" . Microbiology . 145 (Pt 11) (11): 3023–33 . doi : 10.1099/00221287-145-11-3023 . PMID 10589710 .
- 1 2 Hames & Hooper 2006 , p. 221 harvnb error: no target: CITEREFHamesHopper2008 ( ayuda )
- ↑ Wang, Yuan; Li, Shaofang; Zhao, Yonghui; You, Chenjiang; Le, Brandon; Gong, Zhizhong; Mo, Beixin; Xia, Yiji; Chen, Xuemei (2019-06-11). "Los ARN con caperuza NAD+ están ampliamente distribuidos en el transcriptoma de Arabidopsis y probablemente se pueden traducir" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 116 (24): 12094– 12102. doi : 10.1073/pnas.1903682116 . ISSN 1091-6490 . PMC 6575598. PMID 31142655 .
- ↑ Biología . McGraw Hill Education. 2014. págs. 241–242 . ISBN 978-981-4581-85-1.
- ↑ Lodish HF, Berk A, Kaiser C, Krieger M, Scott MP, Bretscher A, Ploegh H, Matsudaira PT (2007). "Capítulo 8: Control genético postranscripcional". Biología celular molecular . San Francisco: WH Freeman. ISBN 978-0-7167-7601-7.
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Lecturas adicionales
- Berg JM, Tymoczko JL, Stryer L (2007). Bioquímica (6 ed.). Nueva York : WH Freeman & Co. ISBN 978-0-7167-6766-4.
- Hames D, Hooper N (2006). Instant Notes Biochemistry . Vol. 58 (3.ª ed.). Leeds : Taylor and Francis. p. 767. ISBN 978-0-415-36778-3. PMID 11098183 .
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- Modificación postranscripcional del ARN en los encabezamientos de materias médicas (MeSH) de la Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU.
- Biología celular
- Biología molecular
- expresión génica
- ARN