Articulo de referencia

Imagen por espectrometría de masas

La espectrometría de masas por imagen ( MSI ) es una técnica utilizada en espectrometría de masas para visualizar la distribución espacial de moléculas, como biomarcadores , met...

La espectrometría de masas por imagen ( MSI ) es una técnica utilizada en espectrometría de masas para visualizar la distribución espacial de moléculas, como biomarcadores , metabolitos , péptidos o proteínas, según sus masas moleculares. Tras obtener un espectro de masas en un punto, la muestra se desplaza a otra región, y así sucesivamente, hasta escanear toda la muestra. Al seleccionar un pico en los espectros resultantes que corresponda al compuesto de interés, los datos de MS se utilizan para mapear su distribución en la muestra. Esto genera imágenes de la distribución espacialmente resuelta de un compuesto, píxel a píxel. Cada conjunto de datos contiene una verdadera galería de imágenes, ya que cualquier pico en cada espectro puede mapearse espacialmente. Si bien la MSI se ha considerado generalmente un método cualitativo, la señal generada por esta técnica es proporcional a la abundancia relativa del analito . Por lo tanto, la cuantificación es posible, una vez superados sus desafíos. Aunque las metodologías tradicionales ampliamente utilizadas, como la radioquímica y la inmunohistoquímica , logran el mismo objetivo que la MSI, tienen limitaciones para analizar múltiples muestras a la vez y pueden resultar insuficientes si los investigadores no tienen conocimiento previo de las muestras que se estudian. [ 1 ] Las tecnologías de ionización más comunes en el campo de la MSI son la imagen DESI , la imagen MALDI , la imagen de espectrometría de masas de iones secundarios ( imagen SIMS ) y la SIMS a nanoescala (NanoSIMS). [ 2 ] [ 3 ] [ 4 ]

Historia

Hace más de 50 años, Castaing y Slodzian introdujeron la espectrometría de masas por imágenes (MSI) utilizando espectrometría de masas de iones secundarios (SIMS) para estudiar superficies de semiconductores. [ 5 ] Sin embargo, fue el trabajo pionero de Richard Caprioli y sus colegas a finales de la década de 1990, que demostró cómo la desorción/ionización láser asistida por matriz (MALDI) podía aplicarse para visualizar grandes biomoléculas (como proteínas y lípidos) en células y tejidos, revelando la función de estas moléculas y cómo esta se ve alterada por enfermedades como el cáncer, lo que condujo al uso generalizado de la MSI. Actualmente, se utilizan diferentes técnicas de ionización, incluyendo SIMS, MALDI e ionización por desorción electrostática (DESI) , así como otras tecnologías. Aun así, MALDI es la tecnología dominante en lo que respecta a las aplicaciones clínicas y biológicas de la MSI. [ 6 ]

Principio de funcionamiento

La espectrometría de masas por imágenes (MSI) se basa en la distribución espacial de la muestra. Por lo tanto, el principio de funcionamiento depende de la técnica empleada para obtener la información espacial. Las dos técnicas utilizadas en MSI son: la microsonda y el microscopio. [ 7 ]

Microsonda

Esta técnica se realiza utilizando un haz de ionización focalizado para analizar una región específica de la muestra mediante la generación de un espectro de masas. El espectro de masas se almacena junto con la coordenada espacial donde se realizó la medición. A continuación, se selecciona y analiza una nueva región moviendo la muestra o el haz de ionización. Estos pasos se repiten hasta que se haya escaneado toda la muestra. Al combinar todos los espectros de masas individuales, se puede trazar un mapa de distribución de intensidades en función de las posiciones x e y. Como resultado, se obtienen imágenes moleculares reconstruidas de la muestra. [ 7 ]

Microscopio

En esta técnica, se utiliza un detector bidimensional sensible a la posición para medir el origen espacial de los iones generados en la superficie de la muestra por la óptica iónica de los instrumentos. La resolución de la información espacial dependerá del aumento del microscopio, la calidad de la óptica iónica y la sensibilidad del detector. Aún es necesario escanear una nueva región, pero el número de posiciones se reduce drásticamente. La limitación de este modo es la profundidad de visión finita presente en todos los microscopios. [ 7 ]

Dependencia de la fuente de iones

Las técnicas de ionización disponibles para MSI se adaptan a diferentes aplicaciones. Algunos de los criterios para elegir el método de ionización son los requisitos de preparación de la muestra y los parámetros de medición, como la resolución, el rango de masas y la sensibilidad. En base a esto, los métodos de ionización más utilizados son MALDI , SIMS y DESI , que se describen a continuación. Otras técnicas menos comunes son la ionización por electrospray con ablación láser (LAESI) , la ionización por plasma acoplado inductivamente con ablación láser (LA-ICP) y la ionización por electrospray con desorción de nanospray (nano-DESI) .

Imágenes SIMS y NanoSIMS

La espectrometría de masas de iones secundarios (SIMS) se utiliza para analizar superficies sólidas y películas delgadas mediante la pulverización de la superficie con un haz de iones primarios enfocado y la posterior recolección y análisis de los iones secundarios eyectados. Existen diversas fuentes para un haz de iones primarios. Sin embargo, este debe contener iones con energías elevadas. Algunas fuentes comunes son: Cs + , O2 + , O, Ar + y Ga + . [ 8 ] La obtención de imágenes mediante SIMS se realiza de forma similar a la microscopía electrónica ; el haz de iones primarios se emite a través de la muestra mientras se registran los espectros de masas secundarios. [ 9 ] La SIMS resulta ventajosa al proporcionar la mayor resolución de imagen, pero solo en áreas pequeñas de las muestras. [ 10 ] Además, esta técnica se considera una de las formas más sensibles de espectrometría de masas , ya que puede detectar elementos en concentraciones tan bajas como 1012-1016 átomos por centímetro cúbico. [ 11 ] [ nota 1 ] [ nota 2 ]

La imagen de haz de iones multiplexado (MIBI) es un método SIMS que utiliza anticuerpos marcados con isótopos metálicos para marcar compuestos en muestras biológicas. [ 12 ]

Desarrollos en SIMS: Se han realizado algunas modificaciones químicas en SIMS para aumentar la eficiencia del proceso. Actualmente se utilizan dos técnicas distintas para aumentar la eficiencia general mediante el incremento de la sensibilidad de las mediciones de SIMS: SIMS con matriz mejorada (ME-SIMS): Esta técnica tiene la misma preparación de muestra que MALDI, ya que simula las propiedades de ionización química de MALDI. ME-SIMS no muestrea tanto material. Sin embargo, si el analito que se está probando tiene un valor de masa bajo, puede producir un espectro de aspecto similar al de un espectro MALDI. ME-SIMS ha sido tan eficaz que ha podido detectar sustancias químicas de baja masa a niveles subcelulares, lo que no era posible antes del desarrollo de la técnica ME-SIMS. [ 4 ] La segunda técnica que se utiliza se llama metalización de la muestra (Meta-SIMS): Este es el proceso de adición de oro o plata a la muestra. Esto forma una capa de oro o plata alrededor de la muestra y normalmente no tiene más de 1-3  nm de espesor. El uso de esta técnica ha dado como resultado un aumento de la sensibilidad para muestras de mayor masa. La adición de la capa metálica también permite la conversión de muestras aislantes en muestras conductoras, por lo que ya no se requiere compensación de carga en los experimentos SIMS. [ 13 ]

 NanoSIMS permite una resolución subcelular (50 nm) [ 2 ] que posibilita un análisis cuantitativo absoluto a nivel de orgánulo .

Imágenes MALDI

Riñón de ratón: (a) Espectros MALDI del tejido. (b) Tejido teñido con H&E. Los N-glicanos con m/z = 1996,7 (c) se localizan en la corteza y la médula, mientras que los de m/z = 2158,7 (d) se encuentran en la corteza. (e) Imagen superpuesta de estas dos masas. (f) Tejido de control no tratado. [ 14 ]

La ionización por desorción láser asistida por matriz (MALDI) puede utilizarse como técnica de imagen por espectrometría de masas para moléculas relativamente grandes. [ 4 ] Recientemente se ha demostrado que el tipo de matriz más eficaz para la obtención de imágenes MALDI de tejido es una matriz iónica. En esta versión de la técnica, la muestra, generalmente una sección delgada de tejido , se mueve en dos dimensiones mientras se registra el espectro de masas . [ 15 ] Si bien MALDI tiene la ventaja de poder registrar la distribución espacial de moléculas más grandes, esto conlleva una menor resolución que la técnica SIMS. El límite de resolución lateral para la mayoría de los instrumentos modernos que utilizan MALDI es de 20μ{\displaystyle \mu }m. Los experimentos MALDI suelen utilizar un láser Nd:YAG (355  nm) o N 2 (337  nm) para la ionización. [ 4 ]

La farmacodinámica y la toxicodinámica en los tejidos se han estudiado mediante imágenes MALDI. [ 16 ]

Imágenes DESI

La ionización por electrospray de desorción (DESI) es una técnica menos destructiva que combina simplicidad y rapidez en el análisis de la muestra. La muestra se rocía con una niebla de disolvente cargada eléctricamente en un ángulo que provoca la ionización y desorción de diversas especies moleculares. A continuación, se generan mapas bidimensionales de la abundancia de los iones seleccionados en la superficie de la muestra en relación con su distribución espacial. [ 17 ] [ 10 ] Esta técnica es aplicable a muestras sólidas, líquidas, congeladas y gaseosas. Además, DESI permite analizar una amplia gama de compuestos orgánicos y biológicos, como tejidos animales y vegetales y muestras de cultivos celulares, sin una preparación compleja de la muestra. [ 6 ] [ 10 ] Aunque esta técnica tiene la resolución más baja entre otras, puede crear imágenes de alta calidad a partir de un escaneo de área grande, como un escaneo de sección corporal completa. [ 10 ]

Imágenes Nano-DESI

La ionización por electrospray con nanospray es una técnica de ionización suave mínimamente destructiva basada en la extracción líquida. [ 18 ] La configuración básica consiste en dos capilares de sílice fundida (primario y secundario). Un disolvente de extracción se suministra a través de un capilar primario, formando un puente líquido en la interfaz de los dos capilares y extrayendo moléculas de la superficie del tejido. Posteriormente, los analitos extraídos se transfieren y nebulizan a través del capilar secundario dentro de la entrada de un espectrómetro de masas . Nano-DESI ofrece una gran versatilidad de disolventes [ 19 ] [ 20 ] y la posibilidad de cuantificar analitos mediante la introducción de estándares internos directamente en el disolvente. [ 21 ]

Imágenes SICRIT

La fuente de ionización suave por reacción química en transferencia (SICRIT) puede acoplarse con técnicas de imagen como MALDI a presión atmosférica (AP- MALDI) o ablación láser . En configuraciones AP-MALDI + SICRIT, SICRIT actúa como una unidad de postionización a presión ambiente, aumentando el rendimiento iónico y ampliando la cobertura molecular, especialmente para metabolitos pequeños y lípidos. Combinada con la ablación láser, SICRIT permite la ionización suave de neutros ablacionados sin la aplicación de matriz, manteniendo una alta resolución espacial de hasta ~1  μm. Estudios recientes [ 22 ] demuestran que el acoplamiento de la desorción láser con la ionización SICRIT basada en plasma mejora la eficiencia de ionización y la estabilidad de la señal en condiciones atmosféricas. La técnica ofrece compatibilidad con diversos espectrómetros de masas y una preparación mínima de la muestra. Las limitaciones incluyen la dependencia de los parámetros de ablación y la cobertura limitada de biomoléculas grandes. La imagen SICRIT es un enfoque emergente que promete una mayor cobertura molecular y flujos de trabajo MSI ambientales flexibles.

Comparación entre las técnicas de ionización

Combinación de diversas técnicas MSI y otras técnicas de imagen

La combinación de diversas técnicas de MSI puede ser beneficiosa, ya que cada técnica particular tiene su propia ventaja. Por ejemplo, cuando se necesita información sobre proteínas y lípidos en la misma sección de tejido, se puede realizar DESI para analizar los lípidos, seguido de MALDI para obtener información sobre los péptidos, y finalmente aplicar una tinción ( hematoxilina y eosina ) para el diagnóstico médico de las características estructurales del tejido. [ 10 ] Por otro lado, la combinación de MSI con otras técnicas de imagen puede destacarse mediante tinción por fluorescencia y resonancia magnética (RM) . La tinción por fluorescencia puede proporcionar información sobre la apariencia de algunas proteínas presentes en cualquier proceso dentro de un tejido, mientras que MSI puede proporcionar información sobre los cambios moleculares que se presentan en ese proceso. Al combinar ambas técnicas, se pueden generar imágenes multimodales o incluso imágenes 3D de la distribución de diferentes moléculas. [ 10 ] Trabajos recientes han demostrado que la técnica MALDI-2 en modo de transmisión combinada con microscopía de fluorescencia en la misma sección de tejido permite la obtención de imágenes de espectrometría de masas (MSI) con resolución de célula única y un registro preciso con la modalidad óptica. [ 23 ] En contraste, la resonancia magnética (RM) con MSI combina la representación 3D continua de la imagen de RM con una representación estructural detallada utilizando información molecular de MSI. Si bien MSI por sí misma puede generar imágenes 3D, la imagen es solo una parte de la realidad debido a la limitación de profundidad en el análisis, mientras que la RM proporciona, por ejemplo, la forma detallada del órgano con información anatómica adicional. Esta técnica acoplada puede ser beneficiosa para el diagnóstico preciso del cáncer y la neurocirugía. [ 10 ]

Proceso de datos

Formato de datos estándar para conjuntos de datos de imágenes de espectrometría de masas

Se propuso imzML para intercambiar datos en un archivo XML estandarizado basado en el formato mzML . [ 24 ] Varias herramientas de software de espectrometría de masas de imágenes lo admiten. La ventaja de este formato es la flexibilidad para intercambiar datos entre diferentes instrumentos y software de análisis de datos. [ 25 ]

Software

Existen numerosos paquetes de software gratuitos para la visualización y el análisis de datos de espectrometría de masas por imágenes. El proyecto Computis desarrolló convertidores de los formatos Thermo Fisher, Analyze, GRD y Bruker al formato imzML. También se encuentran disponibles algunos módulos de software para visualizar imágenes de espectrometría de masas en formato imzML: Biomap (Novartis, gratuito), Datacube Explorer (AMOLF, gratuito), [ 26 ] EasyMSI (CEA), Mirion (JLU), MSiReader (NCSU, gratuito) [ 27 ] y SpectralAnalysis. [ 28 ]

Para procesar archivos .imzML con el lenguaje de programación y gráficos gratuito R, se encuentra disponible una colección de scripts de R que permite el procesamiento paralelo de archivos grandes en una computadora local, un clúster remoto o en la nube de Amazon. [ 29 ]

Existe otro paquete estadístico gratuito para procesar datos de imzML y Analyze 7.5 en R, Cardinal. [ 30 ]

SPUTNIK [ 31 ] es un paquete de R que contiene varios filtros para eliminar picos caracterizados por una distribución espacial no correlacionada con la ubicación de la muestra o aleatoriedad espacial .

El ecosistema de Python proporciona una gama de bibliotecas especializadas para el procesamiento de datos de espectrometría de masas, que satisfacen distintas necesidades analíticas. Para flujos de trabajo completos de extremo a extremo, pyOpenMS ofrece enlaces de Python extensos para la biblioteca OpenMS de C++, facilitando operaciones complejas como el procesamiento de señales, la búsqueda de características y la cuantificación. Por otro lado, pymzML es un analizador sintáctico ligero y altamente eficiente, optimizado específicamente para la extracción rápida de datos y la interacción con mzMLarchivos, lo que lo hace ideal para la creación de prototipos y el acceso dirigido a datos. Pyteomics también funciona como un conjunto de herramientas versátil y ligero, pero admite una gama más amplia de formatos de proteómicamgf comunes (incluidos y pepxml) y se utiliza a menudo por su facilidad de uso en el manejo y los cálculos generales de datos. Para aplicaciones más específicas, matchms es una biblioteca especializada dedicada al procesamiento, la limpieza y la comparación de datos, en particular para la implementación de varios algoritmos de puntuación de similitud espectral esenciales en metabolómica . [ 32 ] [ 33 ] [ 34 ] [ 35 ]

Aplicaciones

Una capacidad notable de la espectrometría de masas por imágenes (MSI) es la de determinar la localización de biomoléculas en los tejidos, incluso sin información previa sobre ellas. Esta característica ha convertido a la MSI en una herramienta única para la investigación clínica y farmacológica. Proporciona información sobre cambios biomoleculares relacionados con enfermedades mediante el seguimiento de proteínas, lípidos y el metabolismo celular. Por ejemplo, la identificación de biomarcadores mediante MSI puede ofrecer un diagnóstico detallado del cáncer. Además, permite obtener imágenes de bajo coste para estudios farmacéuticos, como imágenes de firmas moleculares que serían indicativas de la respuesta al tratamiento con un fármaco específico o de la eficacia de un método de administración de fármacos en particular. [ 36 ] [ 37 ] [ 38 ]

La colocalización de iones se ha estudiado como una forma de inferir interacciones locales entre biomoléculas. De manera similar a la colocalización en imágenes de microscopía , la correlación se ha utilizado para cuantificar la similitud entre imágenes de iones y generar modelos de red. [ 39 ]

Ventajas, desafíos y limitaciones

La principal ventaja de la espectrometría de masas por imágenes (MSI) para estudiar la localización y distribución de las moléculas en el tejido es que este análisis puede proporcionar mayor selectividad, más información o mayor precisión que otros. Además, esta herramienta requiere menor inversión de tiempo y recursos para obtener resultados similares. [ 17 ] La tabla siguiente muestra una comparación de las ventajas y desventajas de algunas técnicas disponibles, incluida la MSI, correlacionadas con el análisis de la distribución de fármacos. [ 5 ]

Notas

  1. A modo de comparación, 1 cm³ de carbono (diamante) contiene aproximadamente 1,8 × 10²³ átomos . De 10¹² a 10¹⁶ corresponde a 6 partes por billón (ppt) a 60 partes por mil millones (ppb).
  2. La sensibilidad varía según el elemento (o molécula), así como según la naturaleza de la superficie analizada y las condiciones del análisis.

Lecturas adicionales

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