Articulo de referencia

Selección de golpes

En el cribado de alto rendimiento (HTS), uno de los objetivos principales es seleccionar compuestos (incluidas moléculas pequeñas , siRNAs , shRNAs , genes , etc.) con un efecto...

En el cribado de alto rendimiento (HTS), uno de los objetivos principales es seleccionar compuestos (incluidas moléculas pequeñas , siRNAs , shRNAs , genes , etc.) con un efecto de inhibición o activación de magnitud deseada. Un compuesto con un efecto de magnitud deseada en un cribado HTS se denomina "hit". El proceso de selección de hits se denomina selección de hits .

Métodos para la selección de resultados en general

Los experimentos HTS tienen la capacidad de examinar decenas de miles (o incluso millones) de compuestos rápidamente. Por lo tanto, es un desafío extraer significado químico/bioquímico de montones de datos en el proceso de selección de compuestos activos. Para abordar este desafío, se han adoptado métodos analíticos apropiados para la selección de compuestos activos. Hay dos estrategias principales para seleccionar compuestos activos con grandes efectos. [ 1 ] Una es usar ciertas métricas para clasificar los compuestos según sus efectos y luego seleccionar la mayor cantidad de compuestos potentes que sea práctica para los ensayos de validación . [ 2 ] [ 3 ] La otra estrategia es probar si un compuesto tiene efectos lo suficientemente fuertes como para alcanzar un nivel preestablecido. En esta estrategia, se deben controlar las tasas de falsos negativos (FNR) y/o las tasas de falsos positivos (FPR). [ 4 ] [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ] [ 8 ] [ 9 ] [ 10 ] [ 11 ]

Existen dos tipos principales de experimentos HTS: uno sin réplicas (generalmente en cribados primarios) y otro con réplicas (generalmente en cribados confirmatorios). Los métodos analíticos para la selección de resultados positivos difieren en estos dos tipos de experimentos HTS. Por ejemplo, el método de puntuación z es adecuado para cribados sin réplicas, mientras que la estadística t es adecuada para cribados con réplicas. El cálculo de SSMD para cribados sin réplicas también difiere del de los cribados con réplicas. [ 1 ]

Pantallas sin réplicas

Existen muchas métricas utilizadas para la selección de resultados positivos en cribados primarios sin réplicas. Las más fáciles de interpretar son el cambio de pliegue , la diferencia media, el porcentaje de inhibición y el porcentaje de actividad. Sin embargo, el inconveniente común a todas estas métricas es que no capturan la variabilidad de los datos de manera efectiva. Para abordar este problema, los investigadores recurrieron al método de puntuación z o SSMD , que puede capturar la variabilidad de los datos en referencias negativas. [ 12 ] [ 13 ]

El método de puntuación z se basa en la suposición de que los valores medidos (generalmente intensidad de fluorescencia en escala logarítmica) de todos los compuestos investigados en una placa tienen una distribución normal . SSMD también funciona mejor bajo la suposición de normalidad. Sin embargo, los resultados positivos con grandes efectos deberían comportarse de manera muy diferente a la mayoría de los compuestos y, por lo tanto, son valores atípicos. Los artefactos de ensayo fuertes también pueden comportarse como valores atípicos. Por lo tanto, los valores atípicos no son infrecuentes en los experimentos de HTS. Las versiones regulares de la puntuación z y SSMD son sensibles a los valores atípicos y pueden ser problemáticas. En consecuencia, se han propuesto y adoptado métodos robustos como el método de puntuación z*, SSMD *, el método de puntuación B y el método basado en cuantiles para la selección de resultados positivos en cribados primarios sin réplicas. [ 14 ] [ 15 ]

En una prueba primaria sin réplicas, cada compuesto se mide solo una vez. Por lo tanto, no podemos estimar directamente la variabilidad de los datos para cada compuesto. En cambio, estimamos indirectamente la variabilidad de los datos asumiendo que cada compuesto tiene la misma variabilidad que una referencia negativa en una placa de la prueba. La puntuación z, la puntuación z* y la puntuación B se basan en esta suposición; al igual que la SSMD y la SSMD* para los casos sin réplicas.

Pantallas con réplicas

En una pantalla con réplicas, podemos estimar directamente la variabilidad de los datos para cada compuesto y, por lo tanto, podemos usar métodos más potentes, como SSMD para casos con réplicas y el estadístico t que no depende de la fuerte suposición en la que se basan la puntuación z y la puntuación z*. Un problema con el uso del estadístico t y los valores p asociados es que se ven afectados tanto por el tamaño de la muestra como por el tamaño del efecto. [ 16 ] Provienen de pruebas de no diferencia de medias, por lo que no están diseñados para medir el tamaño de los efectos de moléculas pequeñas o siRNA. Para la selección de resultados positivos, el principal interés es el tamaño del efecto en una molécula pequeña o siRNA probada . SSMD evalúa directamente el tamaño de los efectos. [ 17 ] También se ha demostrado que SSMD es mejor que otros tamaños de efecto comúnmente utilizados. [ 18 ] El valor poblacional de SSMD es comparable entre experimentos y, por lo tanto, podemos usar el mismo umbral para el valor poblacional de SSMD para medir el tamaño de los efectos de siRNA. [ 19 ]

SSMD puede superar la desventaja de que el cambio de pliegue promedio no pueda capturar la variabilidad de los datos. Por otro lado, dado que SSMD es la razón entre la media y la desviación estándar, podemos obtener un valor de SSMD grande cuando la desviación estándar es muy pequeña, incluso si la media es pequeña. En algunos casos, un valor medio demasiado pequeño puede no tener un impacto biológico. Por lo tanto, los compuestos con valores de SSMD grandes (o diferenciaciones) pero valores medios demasiado pequeños pueden no ser de interés. El concepto de gráfico de doble linterna se ha propuesto para abordar este problema. En un gráfico de doble linterna , representamos el SSMD frente al cambio de pliegue logarítmico promedio (o porcentaje promedio de inhibición/activación) en los ejes y y x, respectivamente, para todos los compuestos investigados en un experimento. [ 19 ] Con el gráfico de doble linterna, podemos ver cómo se distribuyen los genes o compuestos en cada categoría en tamaños de efecto, como se muestra en la figura. Mientras tanto, también podemos ver el cambio de pliegue promedio para cada compuesto. [ 19 ] [ 20 ]

Véase también

Referencias

  1. 1 2 Zhang XHD (2011). Cribado óptimo de alto rendimiento: diseño experimental práctico y análisis de datos para la investigación de ARN de interferencia a escala genómica . Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-73444-8.
  2. Birmingham A, Selfors LM, Forster T, Wrobel D, Kennedy CJ, Shanks E, Santoyo-Lopez J, Dunican DJ, Long A, Kelleher D, Smith Q, Beijersbergen RL, Ghazal P, Shamu CE (2009). "Métodos estadísticos para el análisis de cribados de interferencia de ARN de alto rendimiento" . Nature Methods . 6 (8): 569– 75. doi : 10.1038/nmeth.1351 . PMC 2789971. PMID 19644458 .  
  3. Zhang XHD (2010). " Análisis genómico de siRNAs eficaces mediante la evaluación del tamaño de los efectos de los siRNAs" . BMC Research Notes . 1 : 33. doi : 10.1186/1756-0500-1-33 . PMC 2526086. PMID 18710486 .  
  4. Malo N, Hanley JA, Cerquozzi S, Pelletier J, Nadon R (2006). "Práctica estadística en el análisis de datos de cribado de alto rendimiento". Nature Biotechnology . 24 (2): 167– 75. doi : 10.1038/nbt1186 . PMID 16465162 . S2CID 6158255 .  
  5. Zhang XH, Kuan PF, Ferrer M, Shu X, Liu YC, Gates AT, Kunapuli P, Stec EM, Xu M, Marine SD, Holder DJ, Stulovici B, Heyse JF, Espeseth AS (2009). "Selección de resultados con control de la tasa de falsos descubrimientos en cribados de ARNi a escala genómica" . Nucleic Acids Research . 36 (14): 4667–79 . doi : 10.1093/nar/gkn435 . PMC 2504311. PMID 18628291 .  
  6. Klinghoffer RA, Frazier J, Annis J, Berndt JD, Roberts BS, Arthur WT, Lacson R, Zhang XH, Ferrer M, Moon RT, Cleary MA (2010). "Un cribado genético mediado por lentivirus identifica la dihidrofolato reductasa (DHFR) como modulador de la señalización de beta-catenina/GSK3" . PLOS ONE . 4 (9) e6892. doi : 10.1371/journal.pone.0006892 . PMC 2731218. PMID 19727391 .  
  7. Zhang XHD (2010). "Un método eficaz para controlar los falsos descubrimientos y los falsos no descubrimientos en los cribados de ARN de interferencia a escala genómica" . Journal of Biomolecular Screening . 15 (9): 1116–22 . doi : 10.1177/1087057110381783 . PMID 20855561 . 
  8. Malo N, Hanley JA, Carlile G, Liu J, Pelletier J, Thomas D, Nadon R (2010). "Diseño experimental y métodos estadísticos para mejorar la detección de resultados positivos en el cribado de alto rendimiento" . Journal of Biomolecular Screening . 15 (8): 990– 1000. doi : 10.1177/1087057110377497 . PMID 20817887. S2CID 41358896 .  
  9. Zhang XH, Lacson R, Yang R, Marine SD, McCampbell, Toolan DM, Hare TR, Kajdas J, Berger JP, Holder DJ, Heyse JF, Ferrer M (2010). "El uso de tasas de falso descubrimiento y falso no descubrimiento basadas en SSMD en cribados de ARNi a escala genómica" . Journal of Biomolecular Screening . 15 (9): 1123–31 . doi : 10.1177/1087057110381919 . PMID 20852024 . 
  10. Quon K, Kassner PD (2009). "Análisis de interferencia de ARN para el descubrimiento de dianas oncológicas". Expert Opinion on Therapeutic Targets . 13 (9): 1027– 35. doi : 10.1517/14728220903179338 . PMID 19650760. S2CID 10714162 .  
  11. Zhang XH, Marine SD, Ferrer M (2009). "Tasas de error y potencia en cribados de ARN de interferencia a escala genómica" . Journal of Biomolecular Screening . 14 (3): 230– 38. doi : 10.1177/1087057109331475 . PMID 19211781 . 
  12. Zhang XHD (2007). "Un nuevo método con control flexible y equilibrado de falsos negativos y falsos positivos para la selección de resultados en ensayos de cribado de alto rendimiento de interferencia de ARN" . Journal of Biomolecular Screening . 12 (5): 645– 55. doi : 10.1177/1087057107300645 . PMID 17517904 . 
  13. Zhang XH, Ferrer M, Espeseth AS, Marine SD, Stec EM, Crackower MA, Holder DJ, Heyse JF, Strulovici B (2007). "El uso de la diferencia media estrictamente estandarizada para la selección de resultados en experimentos de cribado de alto rendimiento de interferencia de ARN primaria" . Journal of Biomolecular Screening . 12 (4): 645– 55. doi : 10.1177/1087057107300646 . PMID 17435171. S2CID 7542230 .  
  14. Zhang XH, Yang XC, Chung N, Gates A, Stec E, Kunapuli P, Holder DJ, Ferrer M, Espeseth AS (2006). "Métodos estadísticos robustos para la selección de resultados en experimentos de cribado de alto rendimiento de interferencia de ARN". Farmacogenómica . 7 (3): 299– 09. doi : 10.2217/14622416.7.3.299 . PMID 16610941 . 
  15. Brideau C, Gunter G, Pikounis B, Liaw A (2003). "Métodos estadísticos mejorados para la selección de resultados en el cribado de alto rendimiento" . Journal of Biomolecular Screening . 8 (6): 634– 47. doi : 10.1177/1087057103258285 . PMID 14711389 . 
  16. Cohen J (1994). "La Tierra es redonda (P-menor-que.05)". American Psychologist . 49 (12): 997– 1003. doi : 10.1037/0003-066X.49.12.997 . ISSN 0003-066X . 
  17. Zhang XHD (2009). "Un método para comparar eficazmente los efectos genéticos en múltiples condiciones en la investigación de ARN de interferencia y perfiles de expresión". Farmacogenómica . 10 (3): 345– 58. doi : 10.2217/14622416.10.3.345 . PMID 20397965 . 
  18. Zhang XHD (2010). "Diferencia de medias estrictamente estandarizada, diferencia de medias estandarizada y prueba t clásica para la comparación de dos grupos". Statistics in Biopharmaceutical Research . 2 (2): 292– 99. doi : 10.1198/sbr.2009.0074 . S2CID 119825625 . 
  19. 1 2 3 Zhang XHD (2010). "Evaluación del tamaño de los efectos de genes o ARNi en experimentos multifactoriales de alto rendimiento". Farmacogenómica . 11 (2): 199– 213. doi : 10.2217/PGS.09.136 . PMID 20136359 . 
  20. Zhao WQ, Santini F, Breese R, Ross D, Zhang XD, Stone DJ, Ferrer M, Townsend M, Wolfe AL, Seager MA, Kinney GG, Shughrue PJ, Ray WJ (2010). "La inhibición de la endocitosis mediada por calcineurina y de los receptores de ácido alfa-amino-3-hidroxi-5-metil-4-isoxazolpropiónico (AMPA) previene la disrupción sináptica inducida por oligómeros de beta amiloide" . Journal of Biological Chemistry . 285 (10): 7619–32 . doi : 10.1074/jbc.M109.057182 . PMC 2844209. PMID 20032460 .  

Lecturas adicionales

  • Zhang XHD (2011) "Cribado óptimo de alto rendimiento: diseño experimental práctico y análisis de datos para la investigación de ARN interferente a escala genómica, Cambridge University Press"