Potassium-chloride transporter member 5 (aka: KCC2 and SLC12A5) is a neuron-specific chloride potassium symporter responsible for establishing the chloride ion gradient in neurons through the maintenance of low intracellular chloride concentrations.[5] It is a critical mediator of synaptic inhibition, cellular protection against excitotoxicity[6][7] and may also act as a modulator of neuroplasticity.[8][9][10][11] Potassium-chloride transporter member 5 is also known by the names: KCC2 (potassium chloride cotransporter 2) for its ionic substrates, and SLC12A5 for its genetic origin from the SLC12A5 gene in humans.[5]
Animals with reduced expression of this transporter exhibit severe motor deficits, epileptiform activity, and spasticity.[8] KCC2 knockout animals, in which KCC2 is completely absent, die postnatally due to respiratory failure.[8]
Location
KCC2 is a neuron-specific membrane protein expressed throughout the central nervous system, including the hippocampus, hypothalamus, brainstem, and motoneurons of the ventral spinal cord.[10]
At the subcellular level, KCC2 has been found in membranes of the somata and dendrites of neurons,[8][12] with no evidence of expression on axons.[8] KCC2 has also been shown to colocalize with GABAA receptors, which serve as ligand-gated ion channels to allow chloride ion movement across the cell membrane. Under normal conditions, the opening of GABAA receptors permits the hyperpolarizing influx of chloride ions to inhibit postsynaptic neurons from firing.[7]
Counterintuitively, KCC2 has also been shown to colocalize at excitatory synapses.[6] One suggested explanation for such colocalization is a potential protective role of KCC2 against excitotoxicity.[6][7] Ion influx due to the excitatory synaptic stimulation of ion channels in the neuronal membrane causes osmotic swelling of cells as water is drawn in alongside the ions. KCC2 may help to eliminate excess ions from the cell in order to re-establish osmotichomeostasis.
Structure
KCC2 is a member of the cation-chloride cotransporter (CCC) superfamily of proteins.[13]
As with all CCC proteins, KCC2 is an integral membrane protein with 12 transmembrane domains and both N- and C-terminal cytoplasmic domains. The terminal cytoplasmic domains can be phosphorylated by kinases within the neuron for rapid regulation.
Two Isoforms: KCC2a, KCC2b
There are two isoforms of KCC2: KCC2a and KCC2b.[8][14] The two isoforms arise from alternative promoters on the SLC12A5 gene and differential splicing of the first mRNA exon.[8][14] The isoforms differ in their N-termini, with the KCC2a form constituting the larger of the two splice variants.[15]
KCC2a levels remain relatively constant during pre- and postnatal development.[15]
KCC2b, on the other hand, is scarcely present during prenatal development and is strongly upregulated during postnatal development. The upregulation of KCC2b expression is thought to be responsible for the “developmental shift” observed in mammals from depolarizing postsynaptic effects of inhibitory synapses in early neural networks to hyperpolarizing effects in mature neural networks.[8]
KCC2b knockout mice can survive up to postnatal day 17 (P17) due to the presence of functional KCC2a alone, but they exhibit low body weight, motor deficits and generalized seizures.[8] Complete KCC2 knockouts (both KCC2a and KCC2b absent) die after birth due to respiratory failure.[8]
Oligomerization
Both KCC2 isoforms can form homomultimers, or heteromultimers with other K-Cl symporters on the cell membrane to maintain chloride homeostasis in neurons.[5] Dimers, trimers, and tetramers involving KCC2 have been identified in brainstem neurons.[16] Oligomerization may play an important role in transporter function and activation, as it has been observed that the oligomer to monomer ratio increases in correlation to the development of the chloride ion gradient in neurons.[16]
Developmental changes in expression
KCC2 levels are low during mammalian embryonic development, when neural networks are still being established and neurons are highly plastic (changeable). During this stage, intracellular chloride ion concentrations are high due to low KCC2 expression and high levels of a transporter known as NKCC1 (Na+/K+ chloride cotransporter 1), which moves chloride ions into cells.[17] Thus, during embryonic development, the chloride gradient is such that stimulation of GABAA receptors and glycine receptors at inhibitory synapses causes chloride ions to flow out of cells, making the internal neuronal environment less negative (i.e. more depolarized) than it would be at rest. At this stage, GABAA receptors and glycine receptors act as excitatory rather than inhibitory effectors on postsynaptic neurons, resulting in depolarization and hyperexcitability of neural networks.[8][10][11]
During postnatal development, KCC2 levels are strongly upregulated while NKCC1 levels are down regulated.[17] This change in expression correlates to a developmental shift of the chloride ion concentration within neurons from high to low intracellular concentration. Effectively, as the chloride ion concentration is reduced, the chloride gradient across the cellular membrane is reversed such that GABAA receptor and glycine receptor stimulation causes chloride ion influx, making the internal neuronal environment more negative (i.e. more hyperpolarized) than it would be at rest. This is the developmental shift of inhibitory synapses from the excitatory postsynaptic responses of the early neural development phase to the inhibitory postsynaptic responses observed throughout maturity.
Function
Current literature suggests that KCC2 serves three primary roles within neurons:
- Establishing the chloride ion gradient necessary for postsynaptic inhibition
- Protecting neuronal networks against stimulation-induced excitotoxicity
- Contribuye a la morfogénesis de las espinas dendríticas y a la función sináptica glutamatérgica.
inhibición postsináptica
La expresión reducida o el deterioro funcional de KCC2 provoca un aumento de los niveles intracelulares de cloruro, lo que debilita la señalización GABAérgica inhibitoria y aumenta la excitabilidad neuronal, particularmente en los circuitos del hipocampo.
KCC2 es un simportador de potasio (K + )/cloruro (Cl− ) que mantiene la homeostasis del cloruro en las neuronas. El gradiente electroquímico de cloruro establecido por la actividad de KCC2 es crucial para la inhibición postsináptica clásica a través de los receptores GABA A y los receptores de glicina en el sistema nervioso central. KCC2 utiliza el gradiente de potasio generado por la bomba Na + /K + para impulsar la extrusión de cloruro de las neuronas. [ 8 ] De hecho, cualquier alteración del gradiente neuronal de K + afectaría indirectamente la actividad de KCC2.
La pérdida de KCC2 después de un daño neuronal (es decir, isquemia , daño de la médula espinal, trauma físico al sistema nervioso central) resulta en la pérdida de la regulación inhibitoria y el desarrollo subsiguiente de hiperexcitabilidad neuronal, espasticidad motora y actividad similar a las convulsiones [ 10 ] a medida que los receptores GABA A y los receptores de glicina revierten de efectos postsinápticos hiperpolarizantes a despolarizantes.
Protección celular
Los altos niveles de estimulación y el consiguiente influjo iónico a través de los canales iónicos activados pueden provocar hinchazón celular, ya que el agua, obligada osmóticamente, es atraída hacia las neuronas junto con los solutos iónicos. Este fenómeno se conoce como excitotoxicidad. [ 6 ] Se ha demostrado que el KCC2 se activa por la hinchazón celular y, por lo tanto, puede desempeñar un papel en la eliminación del exceso de iones tras periodos de alta estimulación para mantener el volumen neuronal en estado estacionario y evitar la ruptura celular. [ 6 ]
Este rol también puede explicar el hecho de que se sabe que KCC2 se colocaliza cerca de las sinapsis excitatorias, aunque su función principal es establecer el gradiente de cloruro para la inhibición postsináptica. [ 6 ] [ 7 ]
Morfogénesis y función de las sinapsis glutamatérgicas
Además de controlar la eficacia de las sinapsis GABAérgicas mediante la homeostasis del cloruro, KCC2 desempeña un papel fundamental en la morfogénesis y la función de las sinapsis glutamatérgicas dentro del sistema nervioso central. Estudios realizados en tejido hipocampal de animales knockout de KCC2 mostraron que las neuronas que carecen de KCC2 presentan un crecimiento dendrítico atrofiado y espinas dendríticas malformadas. [ 8 ] Estudios recientes demuestran que KCC2 desempeña un papel fundamental en la estructura y función de las espinas dendríticas [ 9 ] que albergan la mayoría de las sinapsis excitatorias en las neuronas corticales. Mediante una interacción con el citoesqueleto de actina, KCC2 forma una barrera molecular para la difusión de proteínas transmembrana dentro de las espinas dendríticas, regulando así el confinamiento local de los receptores AMPA y la potencia sináptica. [ 9 ]
Se ha propuesto que la regulación negativa de KCC2 observada tras un traumatismo neuronal, y el consiguiente cambio despolarizante de las sinapsis mediadas por GABA A , podría ser un aspecto de la desdiferenciación neuronal. La desdiferenciación de las porciones dañadas del sistema nervioso permitiría que las redes neuronales recuperaran mayores niveles de plasticidad para reorganizar las neuronas supervivientes y compensar el daño en la red. [ 8 ] [ 10 ] [ 11 ] Además, la reducción de la transmisión glutamatérgica tras la regulación negativa de KCC2 podría funcionar como un proceso homeostático para compensar la reducción de la transmisión de GABA debida a la alteración de la extrusión de cloruro. [ 9 ]
Oncogénesis
Las mutaciones en SLC12A5 están asociadas con el cáncer de colon . [ 18 ]
Regulación
Regulación transcripcional: señalización del receptor TrkB
KCC2 se regula negativamente a nivel transcripcional tras una lesión del sistema nervioso central por la cascada de transducción de señales del receptor TrkB (activada por BDNF y NT-4/5 ). [ 19 ] [ 20 ] [ 21 ]
Regulación postraduccional: fosforilación
Tradicionalmente se piensa que la fosforilación inactiva o regula negativamente la KCC2; sin embargo, hay evidencia reciente que sugiere que la fosforilación en diferentes sitios de la proteína KCC2 determina diferentes resultados regulatorios:
- La fosforilación de Wnk1 / Wnk3 y de la tirosina quinasa (es decir, TrkB ) reduce la actividad de KCC2. [ 19 ] [ 20 ] [ 21 ] [ 22 ]
- La fosforilación por PKC del residuo Ser940 del extremo C-terminal de la proteína KCC2 aumenta la actividad de KCC2 al incrementar su estabilidad en la superficie. [ 8 ] Por el contrario, la desfosforilación de Ser940 conduce a una mayor difusión en la membrana y endocitosis de KCC2. [ 23 ]
KCC2 tiene una tasa de recambio extremadamente alta en el plasmalema (minutos), [ 8 ] lo que sugiere que la fosforilación sirve como mecanismo principal para la regulación rápida.
Regulación negativa dependiente de la actividad
KCC2 es regulado negativamente por la actividad excitatoria del glutamato sobre la actividad del receptor NMDA y la entrada de Ca 2+ . [ 11 ] [ 22 ] Este proceso implica una rápida desfosforilación en Ser940 y la escisión de KCC2 por la proteasa calpaína, lo que conduce a una mayor difusión de membrana y endocitosis del transportador, [ 23 ] como se demostró en experimentos que utilizaron seguimiento de partículas individuales .
La liberación de glutamato no solo ocurre en las sinapsis excitatorias, sino que también se sabe que ocurre después de un daño neuronal o una lesión isquémica. [ 11 ] Por lo tanto, la regulación negativa dependiente de la actividad podría ser el mecanismo subyacente por el cual ocurre la regulación negativa de KCC2 después de una lesión del sistema nervioso central.
Véase también
Referencias
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Lecturas adicionales
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Enlaces externos
- Cómo las lesiones cerebrales provocan convulsiones y problemas de memoria. Archivado el 6 de diciembre de 2008 en Wayback Machine - noticias médicas, 20 de octubre de 2006.
Este artículo incorpora texto de la Biblioteca Nacional de Medicina de los Estados Unidos , que es de dominio público .
- Genes en el cromosoma 20 humano
- Familia de transportadores de solutos