Articulo de referencia

Adipogénesis

Características histológicas de un lipoblasto , también conocido como célula precursora de adipocitos o preadipocito. La adipogénesis es la formación de adipocitos (células gras...

Características histológicas de un lipoblasto , también conocido como célula precursora de adipocitos o preadipocito.

La adipogénesis es la formación de adipocitos (células grasas) a partir de células madre. [ 1 ] Implica dos fases: determinación y diferenciación terminal. La determinación consiste en que las células madre mesenquimales se comprometen a convertirse en células precursoras de adipocitos, también conocidas como lipoblastos o preadipocitos, que pierden el potencial de diferenciarse en otros tipos de células como condrocitos , miocitos y osteoblastos . [ 2 ] La diferenciación terminal consiste en que los preadipocitos se diferencian en adipocitos maduros. Los adipocitos pueden originarse a partir de preadipocitos residentes en el tejido adiposo o de células progenitoras derivadas de la médula ósea que migran al tejido adiposo. [ 3 ]

Adipocito diferenciado teñido con Rojo Óleo O

Introducción

Los adipocitos desempeñan un papel vital en la homeostasis energética y procesan la mayor reserva de energía en forma de triglicéridos en el cuerpo de los animales. [ 4 ] Los adipocitos se mantienen en un estado dinámico: comienzan a expandirse cuando la ingesta de energía es mayor que el gasto y se movilizan cuando el gasto energético supera la ingesta. Este proceso está altamente regulado por hormonas contrarreguladoras a las que estas células son muy sensibles. La hormona insulina promueve la expansión, mientras que las hormonas contrarreguladoras epinefrina , glucagón y ACTH promueven la movilización. La adipogénesis es un proceso de diferenciación celular estrictamente regulado, en el que las células madre mesenquimales se comprometen a ser preadipocitos y los preadipocitos se diferencian en adipocitos. La diferenciación celular es un cambio en los patrones de expresión génica, donde la expresión génica multipotente se altera a la expresión génica específica del tipo celular. Por lo tanto, los factores de transcripción son cruciales para la adipogénesis. Los factores de transcripción, el receptor γ activado por proliferadores de peroxis (PPARγ) y las proteínas de unión al potenciador CCAAT (C/EBP) son los principales reguladores de la adipogénesis. [ 5 ] En comparación con las células de otro linaje, la diferenciación in vitro de las células grasas es auténtica y recapitula la mayoría de las características de la diferenciación in vivo. Las características clave de los adipocitos diferenciados son la detención del crecimiento, el cambio morfológico, la alta expresión de genes lipogénicos y la producción de adipocinas como la adiponectina , la leptina , la resistina (en el ratón, no en humanos) y el TNF-alfa .

Diferenciación

Los estudios in vitro sobre diferenciación han utilizado el linaje de preadipocitos precomprometidos, como las líneas celulares 3T3-L1 y 3T3-F442A, o preadipocitos aislados de la fracción estromal-vascular del tejido adiposo blanco. La diferenciación in vitro es un proceso altamente ordenado. En primer lugar, los preadipocitos proliferantes detienen su crecimiento, generalmente por inhibición por contacto. La detención del crecimiento va seguida de los primeros eventos, incluyendo un cambio morfológico del preadipocito de forma fibroblástica a forma redondeada y la inducción de los factores de transcripción C/EBPβ y C/EBPδ . La segunda fase de la detención del crecimiento es la expresión de dos factores de transcripción clave, PPARγ y C/EBPα , que promueven la expresión de genes que confieren las características de los adipocitos maduros. Estos genes incluyen la proteína del adipocito (aP2) , el receptor de insulina, la glicerofosfato deshidrogenasa, la sintasa de ácidos grasos, la acetil CoA carboxilasa, el transportador de glucosa tipo 4 (Glut 4) , etc. [ 6 ] Mediante este proceso, se acumulan gotas lipídicas en el adipocito . Sin embargo, las líneas celulares de preadipocitos tienen dificultades para diferenciarse en adipocitos. Los preadipocitos muestran los marcadores de superficie CD45 CD31 CD34 + CD29 + SCA1 + CD24 + y pueden proliferar y diferenciarse en adipocitos in vivo. [ 7 ]

Modelos de diferenciación in vitro

Regulaciones transcripcionales

PPARγ

PPARγ es un miembro de la superfamilia de receptores nucleares y es el regulador maestro de la adipogénesis. PPARγ heterodimeriza con el receptor de retinoides X (RXR) y luego se une al ADN, lo que activa los promotores de los genes posteriores. PPARγ induce genes específicos de las células grasas, incluyendo aP2, adiponectina y fosfoenolpiruvato carboxiquinasa (PEPCK) . La activación de PPARγ tiene efectos en varios aspectos de las características del adipocito maduro, como cambios morfológicos, acumulación de lípidos y adquisición de sensibilidad a la insulina. [ 21 ] PPARγ es necesario y suficiente para promover la diferenciación de las células grasas. PPARγ es necesario para la diferenciación de células madre embrionarias (células ES) a adipocitos . [ 22 ] La expresión de PPARγ por sí misma es suficiente para convertir fibroblastos en adipocitos in vitro. [ 23 ] Se ha demostrado que otros factores proadipogénicos como C/EBP y factores tipo Krüppel (KLF) inducen el promotor de PPARγ . Además, PPARγ también es necesario para mantener la expresión de genes que caracterizan al adipocito maduro. [ 24 ] Las tiazolidinedionas (TZD), agentes antidiabéticos que se utilizan ampliamente en cócteles de diferenciación in vitro, promueven la actividad de PPARγ .

C/EBPs

Los C/EBP , factores de transcripción, son miembros de la clase de cremallera de leucina básica. El cAMP, un inductor de la adipogénesis, puede promover la expresión de C/EBPβ y C/EBPδ . [ 25 ] En la etapa temprana de la diferenciación, se cree que el aumento transitorio de los niveles de ARNm y proteína de C/EBPβ y C/EBPδ activa los factores de transcripción adipogénicos, PPARγ y C/EBPα . PPARγ y C/EBPα pueden retroalimentarse para inducir la expresión del otro, así como de sus genes posteriores. [ 26 ] C/EBPα también juega un papel importante en la sensibilidad a la insulina de los adipocitos. [ 27 ] Sin embargo, C/EBPγ suprime la diferenciación, lo que podría deberse a la inactivación por C/EBPβ .

Cascada transcripcional

Aunque PPARγ y C/EBPα son reguladores maestros de la adipogénesis, otros factores de transcripción funcionan en la progresión de la diferenciación. El factor de determinación y diferenciación de adipocitos 1 (ADD1) y la proteína de unión al elemento regulador de esteroles 1 (SREBP1) pueden activar PPARγ mediante la producción de un ligando endógeno de PPARγ o promover directamente la expresión de PPARγ . La proteína de unión al elemento de respuesta a cAMP promueve la diferenciación, mientras que la activación de PPARγ y C/EBPα también responde a la regulación negativa. El factor de células T/factor de unión al potenciador linfoide (TCF/LEF) , [ 28 ] GATA2/3, [ 29 ] el receptor de ácido retinoico α, [ 30 ] y SMAD6/7 [ 31 ] no afectan la expresión de C/EBPβ y C/EBPδ pero inhiben la inducción de PPARγ y C/EBPα .

Regulación epigenética: TET1

Función epigenética de TET1 en la adipogénesis.

TET1 desempeña un papel importante en las primeras etapas de la adipogénesis. Durante este proceso, TET1 aumenta su expresión y promueve la desmetilación del ADN. Esta modificación epigenética facilita la activación de los genes necesarios para la formación de adipocitos. De esta manera, TET1 ayuda a las células progenitoras a cambiar su identidad y adquirir las características de los adipocitos maduros. [ 32 ]

Otras regulaciones

Los productos del sistema endocrino, como la insulina , el IGF-1 , el AMPc , los glucocorticoides y la triyodotironina , inducen eficazmente la adipogénesis en los preadipocitos. [ 33 ] [ 34 ] [ 35 ]

Insulina e IGF1

La insulina regula la adipogénesis a través de la señalización del receptor del factor de crecimiento similar a la insulina 1 (IGF1) . La insulina/IGF1 promueve la inducción de factores de transcripción que regulan la diferenciación terminal.

señalización Wnt

La señalización Wnt/β-catenina suprime la adipogénesis, al promover la diferenciación de células madre mesenquimales en miocitos y osteocitos , pero bloqueando el compromiso con el linaje adipocítico. [ 36 ] La señalización Wnt/β-catenina inhibe la diferenciación de preadipocitos al inhibir la inducción de PPARγ y C/EBPα .

Mejores prácticas de gestión

Las proteínas morfogenéticas óseas (BMP) pertenecen a la superfamilia del factor de crecimiento transformante β (TGFβ). La BMP2 puede estimular la determinación de células multipotentes o inducir la osteogénesis a través de diferentes heterómeros receptores. [ 37 ] Las BMP también promueven la diferenciación de preadipocitos.

Células senescentes

Se ha demostrado que las células progenitoras adiposas senescentes en el tejido adiposo subcutáneo suprimen la diferenciación adipogénica. [ 38 ] La reducción de la adipogénesis en personas obesas se debe a un aumento de las células senescentes en el tejido adiposo, más que a una reducción en el número de células madre/progenitoras. [ 39 ]

Referencias

  1. "Adipogénesis" . Merriam-Webster . Consultado el 3 de enero de 2020 .
  2. Gregoire FM, Smas CM, Sul HS (julio de 1998). "Comprender la diferenciación de los adipocitos". Physiological Reviews . 78 (3): 783– 809. doi : 10.1152/physrev.1998.78.3.783 . PMID 9674695. S2CID 1538359 .  
  3. Hausman GJ, Hausman DB (2006). "Búsqueda de la célula progenitora preadipocitaria" . Journal of Clinical Investigation . 116 (12): 3103– 3106. doi : 10.1172/JCI30666 . PMC 1679717. PMID 17143324 .  
  4. Cornelius P, MacDougald OA, Lane MD (1994). "Regulación del desarrollo de los adipocitos". Annual Review of Nutrition . 14 (1): 99– 129. Bibcode : 1994ARNut..14...99C . doi : 10.1146/annurev.nu.14.070194.000531 . PMID 7946535 . 
  5. Rosen ED, MacDougald OA (diciembre de 2006). "Diferenciación de adipocitos desde adentro hacia afuera". Nature Reviews. Biología Celular Molecular . 7 (12): 885– 96. doi : 10.1038/nrm2066 . PMID 17139329. S2CID 189384 .  
  6. Rosen ED, Walkey CJ, Puigserver P, Spiegelman BM (junio de 2000). " Regulación transcripcional de la adipogénesis" . Genes & Development . 14 (11): 1293–307 . doi : 10.1101/gad.14.11.1293 . PMID 10837022. S2CID 5661544 .  
  7. Rodeheffer MS, Birsoy K, Friedman JM (octubre de 2008). "Identificación de células progenitoras de adipocitos blancos in vivo" . Cell . 135 (2): 240–9 . doi : 10.1016/j.cell.2008.09.036 . PMID 18835024. S2CID 12127266 .  
  8. Green H, Kehinde O (28 de febrero de 1974). "Sublíneas de células 3T3 de ratón que acumulan lípidos". Cell . 1 (3): 113– 116. Bibcode : 1974Cell....1..113G . doi : 10.1016/0092-8674(74)90126-3 .
  9. Green H, Kehinde O (enero de 1976). "Cambios hereditarios espontáneos que conducen a una mayor conversión adiposa en células 3T3". Cell . 7 (1): 105–13 . doi : 10.1016/0092-8674(76)90260-9 . PMID 949738. S2CID 41406809 .  
  10. Négrel R, Grimaldi P, Ailhaud G (diciembre de 1978). "Establecimiento de una línea clonal de preadipocitos a partir de la almohadilla de grasa epididimal del ratón ob/ob que responde a la insulina y a las hormonas lipolíticas" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 75 (12): 6054–8 . Bibcode : 1978PNAS...75.6054N . doi : 10.1073/pnas.75.12.6054 . PMC 393116. PMID 216011 .  
  11. Chapman AB, Knight DM, Dieckmann BS, Ringold GM (diciembre de 1984). "Análisis de la expresión génica durante la diferenciación de células adipogénicas en cultivo y control hormonal del programa de desarrollo" . The Journal of Biological Chemistry . 259 (24): 15548– 55. doi : 10.1016/S0021-9258(17)42583-X . PMID 6392298 . 
  12. Pape ME, Kim KH (mayo de 1988). "Efecto del factor de necrosis tumoral en la expresión del gen de la acetil-coenzima A carboxilasa y la diferenciación de preadipocitos" . Endocrinología molecular . 2 (5): 395– 403. doi : 10.1210/mend-2-5-395 . PMID 2901666 . 
  13. Darmon M, Serrero G, Rizzino A, Sato G (abril de 1981). "Aislamiento de líneas celulares clonales mioblásticas, fibroadipogénicas y fibroblásticas a partir de un precursor común y estudio de sus requerimientos para el crecimiento y la diferenciación". Experimental Cell Research . 132 (2): 313–27 . doi : 10.1016/0014-4827(81)90107-5 . PMID 7215448 . 
  14. Jainchill JL, Aaronson SA, Todaro GJ (noviembre de 1969). "Virus del sarcoma y la leucemia murinos: ensayo utilizando líneas clonales de células de ratón con inhibición por contacto" . Journal of Virology . 4 (5): 549– 53. doi : 10.1128/jvi.4.5.549-553.1969 . PMC 375908. PMID 4311790 .  
  15. Todaro GJ, Green H (mayo de 1963). "Estudios cuantitativos del crecimiento de células embrionarias de ratón en cultivo y su desarrollo en líneas establecidas" . The Journal of Cell Biology . 17 (2): 299– 313. doi : 10.1083/jcb.17.2.299 . PMC 2106200. PMID 13985244 .  
  16. Aaronson SA, Todaro GJ (octubre de 1968). "Desarrollo de líneas similares a 3T3 a partir de cultivos de embriones de ratón Balb-c: susceptibilidad a la transformación por SV40". Journal of Cellular Physiology . 72 (2): 141–8 . doi : 10.1002/jcp.1040720208 . PMID 4301006. S2CID 31332589 .  
  17. Reznikoff CA, Brankow DW, Heidelberger C (diciembre de 1973). "Establecimiento y caracterización de una línea clonada de células embrionarias de ratón C3H sensibles a la inhibición de la división postconfluencia". Cancer Research . 33 (12): 3231–8 . PMID 4357355 . 
  18. ^ Allan EH, Häusler KD, Wei T, Gooi JH, Quinn JM, Crimeen-Irwin B, et al. (Agosto de 2008). "Regulación de EfrinB2 por PTH y PTHrP revelada por perfiles moleculares en la diferenciación de osteoblastos" . Revista de investigación de huesos y minerales . 23 (8): 1170– 81. doi : 10.1359/jbmr.080324 . PMID 18627264 .  
  19. Yaffe D, Saxel O (22–29 de diciembre de 1977). "Pasaje seriado y diferenciación de células miogénicas aisladas del músculo distrófico de ratón". Nature . 270 ( 5639): 725– 7. Bibcode : 1977Natur.270..725Y . doi : 10.1038/270725a0 . PMID 563524. S2CID 4196110 .  
  20. Christian CN, Nelson PG, Peacock J, Nirenberg M (mayo de 1977). "Formación de sinapsis entre dos líneas celulares clonales". Science . 196 (4293): 995–8 . Bibcode : 1977Sci...196..995C . doi : 10.1126/science.193191 . PMID 193191 . 
  21. Mota de Sá P, Richard AJ, Hang H, Stephens JM (marzo de 2017). «Regulación transcripcional de la adipogénesis». Comprehensive Physiology . 7 (2): 635– 674. doi : 10.1002/cphy.c160022 . ISBN 9780470650714. PMID 28333384 . 
  22. ^ Rosen ED, Sarraf P, Troy AE, Bradwin G, Moore K, Milstone DS y col. (octubre de 1999). "Se requiere PPAR gamma para la diferenciación del tejido adiposo in vivo e in vitro" . Célula molecular . 4 (4): 611– 7. doi : 10.1016/s1097-2765(00)80211-7 . PMID 10549292 .  
  23. Tontonoz P, Hu E, Spiegelman BM (diciembre de 1994). "Estimulación de la adipogénesis en fibroblastos por PPAR gamma 2, un factor de transcripción activado por lípidos". Cell . 79 ( 7): 1147– 56. doi : 10.1016/0092-8674(94)90006-x . PMID 8001151. S2CID 54387527 .  
  24. Tamori Y, Masugi J, Nishino N, Kasuga M (julio de 2002). "Función del receptor gamma activado por proliferadores de peroxisomas en el mantenimiento de las características de los adipocitos 3T3-L1 maduros" . Diabetes . 51 (7): 2045– 55. doi : 10.2337/diabetes.51.7.2045 . PMID 12086932 . 
  25. Cao Z, Umek RM, McKnight SL (septiembre de 1991). "Expresión regulada de tres isoformas de C/EBP durante la conversión adiposa de células 3T3-L1" . Genes & Development . 5 (9): 1538– 52. doi : 10.1101/gad.5.9.1538 . PMID 1840554 . 
  26. MacDougald OA, Mandrup S (enero de 2002). "Adipogénesis: fuerzas que inclinan la balanza". Tendencias en Endocrinología y Metabolismo . 13 (1): 5– 11. doi : 10.1016/s1043-2760(01)00517-3 . PMID 11750856. S2CID 39531967 .  
  27. Wu Z, Rosen ED, Brun R, Hauser S, Adelmant G, Troy AE, et al. (febrero de 1999). "La regulación cruzada de C/EBP alfa y PPAR gamma controla la vía transcripcional de la adipogénesis y la sensibilidad a la insulina" . Molecular Cell . 3 (2): 151–8 . doi : 10.1016/s1097-2765(00)80306-8 . PMID 10078198 .  
  28. Ross SE, Hemati N, Longo KA, Bennett CN, Lucas PC, Erickson RL, MacDougald OA (agosto de 2000). "Inhibición de la adipogénesis por la señalización Wnt". Science . 289 (5481): 950–3 . Bibcode : 2000Sci...289..950R . doi : 10.1126/science.289.5481.950 . PMID 10937998 . 
  29. Tong Q, Dalgin G, Xu H, Ting CN, Leiden JM, Hotamisligil GS (octubre de 2000). "Función de los factores de transcripción GATA en la transición preadipocito-adipocito". Science . 290 (5489): 134– 8. Bibcode : 2000Sci...290..134T . doi : 10.1126 /science.290.5489.134 . PMID 11021798. S2CID 8445774 .  
  30. Schwarz EJ, Reginato MJ, Shao D, Krakow SL, Lazar MA (marzo de 1997). "El ácido retinoico bloquea la adipogénesis al inhibir la transcripción mediada por C/EBPbeta" . Biología molecular y celular . 17 (3): 1552–61 . doi : 10.1128/mcb.17.3.1552 . PMC 231881. PMID 9032283 .  
  31. Choy L, Skillington J, Derynck R (mayo de 2000). "Funciones del receptor autocrino de TGF-beta y la señalización de Smad en la diferenciación de adipocitos" . The Journal of Cell Biology . 149 (3): 667–82 . doi : 10.1083/jcb.149.3.667 . PMC 2174852. PMID 10791980 .  
  32. ^ Chen, Zeyuan Johnson; Das, Sankha Subhra; Kar, Asha; Lee, Seung Hyuk T.; Abuhanna, Kevin D.; Álvarez, Marco; Sukhatme, Mihir G.; Wang, Zitian; Gelev, Kyla Z.; Heffel, Mateo G.; Zhang, Yi; Avram, Oren; Rahmani, Elior; Sankararaman, Sriram; Laakso, Markku; Heinonen, Sini; Peltoniemi, Hilkka; Halperin, Eran; Pietiläinen, Kirsi H.; Luo, Chongyuan; Pajukanta, Päivi (2025). "Metiloma de ADN unicelular y atlas del genoma 3D del tejido adiposo subcutáneo humano" . Genética de la Naturaleza . 57 (9): 2238– 2249. doi : 10.1038/s41588-025-02300-4 . PMID 40835891 . 
  33. Estudiante AK, Hsu RY, Lane MD (mayo de 1980). "Inducción de la síntesis de la sintetasa de ácidos grasos en preadipocitos 3T3-L1 en diferenciación" . The Journal of Biological Chemistry . 255 (10): 4745– 50. doi : 10.1016/S0021-9258(19)85559-X . PMID 7372608 . 
  34. Spiegelman BM, Green H (septiembre de 1980). "Control de la biosíntesis de proteínas específicas durante la conversión adiposa de células 3T3" . The Journal of Biological Chemistry . 255 (18): 8811–18 . doi : 10.1016/S0021-9258(18)43575-2 . PMID 6773950 . 
  35. Amri EZ, Dani C, Doglio A, Etienne J, Grimaldi P, Ailhaud G (agosto de 1986). "Diferenciación de células adiposas: evidencia de un proceso de dos pasos en la línea clonal Ob1754 dependiente de poliaminas" . The Biochemical Journal . 238 (1): 115–22 . doi : 10.1042/bj2380115 . PMC 1147104. PMID 3800927 .  
  36. Christodoulides C, Lagathu C, Sethi JK, Vidal-Puig A (enero de 2009). "Adipogénesis y señalización WNT" . Tendencias en Endocrinología y Metabolismo . 20 (1): 16– 24. doi : 10.1016/j.tem.2008.09.002 . PMC 4304002. PMID 19008118 .  
  37. Chen D, Ji X, Harris MA, Feng JQ, Karsenty G, Celeste AJ, et al. (julio de 1998). "Funciones diferenciales de los receptores de proteína morfogenética ósea (BMP) tipo IB e IA en la diferenciación y especificación de células precursoras mesenquimales a linajes de osteoblastos y adipocitos" . The Journal of Cell Biology . 142 (1): 295–305 . doi : 10.1083/jcb.142.1.295 . PMC 2133031. PMID 9660882 .   
  38. Eckel-Mahan K, Latre AR, Kolonin MG (2020). "Expansión y agotamiento de las células estromales adiposas: mecanismos y consecuencias" . Cells . 9 (4): 863. doi : 10.3390/cells9040863 . PMC 7226766. PMID 32252348 .  
  39. Gustafson B, Nerstedt A, Smith U (2019). "La adipogénesis subcutánea reducida en la obesidad hipertrófica humana está relacionada con células precursoras senescentes" . Nature Communications . 10 (1) 2757. Bibcode : 2019NatCo..10.2757G . doi : 10.1038/s41467-019-10688- x . PMC 6588633. PMID 31227697 .