Articulo de referencia

yoduro de propidio

27 H 34 I 2 N 4 \n| MolarMass=668.3946\n| Appearance=\n| Density=\n| MeltingPt=\n| BoilingPt=\n| Solubility=\n }}"},"Section3":{"wt":"{{Chembox Hazards\n| MainHazards=\n| FlashP...

El yoduro de propidio (o PI ) es un agente intercalante fluorescente que se puede usar para teñir células y ácidos nucleicos . El PI se une al ADN intercalándose entre las bases con poca o ninguna preferencia de secuencia. En solución acuosa, el PI tiene un máximo de excitación fluorescente de 493 nm (azul-verde) y un máximo de emisión de 636 nm (rojo). Después de unirse al ADN, el rendimiento cuántico del PI aumenta de 20 a 30 veces, y el máximo de excitación/emisión del PI se desplaza a 535 nm (verde) / 617 nm (naranja-rojo). [ 1 ] El yoduro de propidio se usa como tinción de ADN en citometría de flujo para evaluar la viabilidad celular o el contenido de ADN en el análisis del ciclo celular , [ 2 ] o en microscopía para visualizar el núcleo y otros orgánulos que contienen ADN. El yoduro de propidio no es permeable a la membrana, lo que lo hace útil para diferenciar células necróticas , apoptóticas y sanas según la integridad de la membrana. [ 3 ] [ 4 ] El PI también se une al ARN , lo que requiere tratamiento con nucleasas para distinguir entre la tinción de ARN y ADN. [ 5 ] El PI se utiliza ampliamente en la tinción por fluorescencia y la visualización de la pared celular vegetal. [ 6 ]

Véase también

Referencias

  1. "Yoduro de propidio" . Thermo Fisher Scientific. 14 de noviembre de 2019. Consultado el 14 de noviembre de 2019 .
  2. "Solución de yoduro de propidio - BioLegend" . Archivado del original el 10 de febrero de 2015. Consultado el 10 de enero de 2015 .
  3. Lecoeur H (2002). "Detección de apoptosis nuclear mediante citometría de flujo: influencia de las endonucleasas endógenas". Exp. Cell Res . 277 (1): 1– 14. doi : 10.1006/excr.2002.5537 . PMID 12061813 . 
  4. "Yoduro de propidio" . ThermoFisher.
  5. Suzuki T, Fujikura K, Higashiyama T, Takata K (1 de enero de 1997). "Tinción de ADN para microscopía confocal de fluorescencia y láser" . J. Histochem. Cytochem . 45 (1): 49– 53. doi : 10.1177/002215549704500107 . PMID 9010468 . 
  6. Bidhendi, AJ; Chebli, Y; Geitmann, A (mayo de 2020). "Visualización por fluorescencia de celulosa y pectina en la pared celular primaria de la planta". Journal of Microscopy . 278 (3): 164– 181. doi : 10.1111/jmi.12895 . PMID 32270489. S2CID 215619998 .