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Amplificación de sondas dependiente de ligación multiplex

La amplificación de sondas dependiente de ligación múltiple ( MLPA ) es una variante de la reacción en cadena de la polimerasa múltiple que permite la amplificación de múltiples...

La amplificación de sondas dependiente de ligación múltiple ( MLPA ) es una variante de la reacción en cadena de la polimerasa múltiple que permite la amplificación de múltiples dianas con un único par de cebadores . [ 1 ] Detecta cambios en el número de copias a nivel molecular y se utilizan programas informáticos para su análisis. La identificación de deleciones o duplicaciones puede indicar mutaciones patógenas; por lo tanto, la MLPA es una herramienta diagnóstica importante utilizada en laboratorios de patología clínica en todo el mundo.

Historia

La amplificación de sondas dependiente de ligación múltiple (MLPA) fue inventada por Jan Schouten , un científico neerlandés. [ 1 ] El método se describió por primera vez en 2002 en la revista científica Nucleic Acid Research . [ 2 ] Las primeras aplicaciones incluyeron la detección de deleciones de exones en los genes humanos BRCA1 , MSH2 y MLH1 , que están relacionados con el cáncer de mama y de colon hereditario. Actualmente, la MLPA se utiliza para detectar cientos de trastornos hereditarios, así como para la caracterización de tumores.

Descripción

Ejemplo de deleciones de exones detectadas mediante amplificación de sonda dependiente de ligación múltiple en un paciente con distrofia muscular de Duchenne.

MLPA cuantifica la presencia de secuencias particulares en una muestra de ADN, utilizando un par de sondas especialmente diseñadas para cada secuencia diana de interés. El proceso consta de varios pasos: [ 3 ]

  1. El ADN de la muestra se desnaturaliza , lo que da como resultado un ADN de muestra monocatenario.
  2. Se hibridan pares de sondas al ADN de la muestra, y cada par de sondas está diseñado para detectar la presencia de una secuencia de ADN específica.
  3. La ligasa se aplica al ADN hibridado, combinando pares de sondas que se hibridan inmediatamente una al lado de la otra para formar una sola hebra de ADN que puede amplificarse mediante PCR.
  4. La PCR amplifica todos los pares de sondas que se han ligado correctamente, utilizando cebadores de PCR marcados con fluorescencia.
  5. Los productos de PCR se cuantifican, normalmente mediante electroforesis (capilar) .

Cada par de sondas consta de dos oligonucleótidos, con una secuencia que reconoce sitios adyacentes del ADN diana , un sitio de cebado de PCR y, opcionalmente, un fragmento de relleno para dar al producto de PCR una longitud única en comparación con otros pares de sondas en el ensayo MLPA. Cada par de sondas completo debe tener una longitud única, de modo que sus amplicones resultantes puedan identificarse de forma unívoca durante la cuantificación, evitando las limitaciones de resolución de la PCR múltiple . Dado que el cebador directo utilizado para la amplificación de la sonda está marcado con fluorescencia , cada amplicón genera un pico fluorescente que puede detectarse mediante un secuenciador capilar. Comparando el patrón de picos obtenido en una muestra determinada con el obtenido en varias muestras de referencia, se puede determinar la cantidad relativa de cada amplicón. Esta proporción es una medida de la proporción en la que la secuencia diana está presente en el ADN de la muestra.

Diversas técnicas, como la electroforesis en gel con gradiente desnaturalizante (DGGE ), la cromatografía líquida de alta resolución desnaturalizante (DHPLC ) y el análisis de conformación de cadena simple (SSCA), identifican eficazmente los SNP y las pequeñas inserciones y deleciones. Sin embargo, la MLPA es una de las pocas técnicas precisas y rápidas para detectar deleciones e inserciones genómicas (uno o más exones completos), que son causas frecuentes de cánceres como el cáncer colorrectal hereditario no polipósico ( HNPCC ), el cáncer de mama y el cáncer de ovario. La MLPA puede determinar con éxito y facilidad el número de copias relativas de todos los exones dentro de un gen simultáneamente con alta sensibilidad.

ploidía relativa

Una aplicación importante de MLPA es la determinación de la ploidía relativa . Por ejemplo, se pueden diseñar sondas para analizar diversas regiones del cromosoma 21 de una célula humana. La intensidad de la señal de las sondas se compara con la obtenida de una muestra de ADN de referencia que contiene dos copias del cromosoma. Si la muestra contiene una copia adicional, se espera que la intensidad de la señal sea 1,5 veces mayor que la de las sondas de referencia. Si solo hay una copia, la proporción esperada es de 0,5. Si la muestra contiene dos copias, se espera que la intensidad relativa de las sondas sea igual.

Análisis del cociente de dosis

El análisis del cociente de dosis es el método habitual para interpretar los datos de MLPA. [ 4 ] Si a y b son las señales de dos amplicones en la muestra del paciente, y A y B son los amplicones correspondientes en el control experimental, entonces el cociente de dosis DQ = (a/b) / (A/B). Aunque los cocientes de dosis pueden calcularse para cualquier par de amplicones, normalmente uno de ellos es una sonda de referencia interna.

Aplicaciones

La técnica MLPA facilita la amplificación y detección de múltiples secuencias con un único par de cebadores. En una reacción de PCR múltiple estándar, cada fragmento requiere un par de cebadores de amplificación específico. La presencia de estos cebadores en grandes cantidades genera diversos problemas, como la dimerización y la amplificación inespecífica. Con MLPA, se puede lograr la amplificación de sondas. De esta forma, se pueden amplificar y cuantificar numerosas secuencias (hasta 40) utilizando un solo par de cebadores. La reacción MLPA es rápida, económica y muy sencilla de realizar.

MLPA tiene diversas aplicaciones [ 5 ] incluyendo la detección de mutaciones y polimorfismos de un solo nucleótido , [ 6 ] el análisis de la metilación del ADN , [ 7 ] la cuantificación relativa de ARNm , [ 8 ] la caracterización cromosómica de líneas celulares y muestras de tejido, [ 9 ] la detección del número de copias de genes, [ 10 ] la detección de duplicaciones y deleciones en genes de predisposición al cáncer humano como BRCA1 , BRCA2 , hMLH1 y hMSH2 [ 11 ] y la determinación de aneuploidía . [ 12 ] MLPA tiene una aplicación potencial en el diagnóstico prenatal, tanto invasivo [ 13 ] como no invasivo . [ 14 ]

Estudios recientes han demostrado que MLPA (así como otras variantes como iMLPA) es una técnica robusta para la caracterización de la inversión. [ 15 ]

Variantes

MS-MLPA

La MLPA específica para metilación (MS-MLPA) combina la MLPA estándar con la digestión con enzimas de restricción sensibles a la metilación, de modo que el mismo ensayo puede evaluar el número de copias y la metilación de CpG específicos. [ 16 ] Tiene uso clínico en trastornos de impronta y metilación como el síndrome de Prader-Willi y el síndrome de Angelman. [ 7 ]

iMLPA

Diferencias entre MLPA e iMLPA

Giner-Delgado, Carla, et al. describieron una variante de MLPA que la combina con iPCR. Llaman a este nuevo método iMLPA [ 15 ] y su procedimiento es el mismo que el de MLPA, pero son necesarios dos pasos adicionales al principio:

  1. En primer lugar, es necesario un tratamiento del ADN con enzimas de restricción que corten a ambos lados de la región de interés.
  2. Los fragmentos obtenidos de la digestión se recircularizan y se enlazan.

El diseño de la sonda es bastante similar. Cada sonda consta de dos partes que incluyen, como mínimo: una secuencia diana , que es una región que contiene la secuencia complementaria a la región de interés, para que se produzca la hibridación correcta; y una secuencia cebadora en el extremo, cuyo diseño varía y que permite el diseño de los cebadores y la posterior amplificación de los fragmentos. Además, una de las partes de la sonda suele contener un relleno entre la secuencia diana y la secuencia cebadora. El uso de diferentes rellenos permite identificar sondas con las mismas secuencias cebadoras pero diferentes secuencias diana, lo cual es fundamental para la amplificación múltiple de varios fragmentos diferentes en una sola reacción.

El siguiente paso continúa con el protocolo MLPA típico. [ 1 ]

Referencias

  1. 1 2 3 Schouten JP, McElgunn CJ, Waaijer R, Zwijnenburg D, Diepvens F, Pals G (2002). "Cuantificación relativa de 40 secuencias de ácidos nucleicos mediante amplificación de sondas dependiente de ligación multiplex" . Nucleic Acids Res . 30 (12): 57e–57. doi : 10.1093/nar/gnf056 . PMC 117299. PMID 12060695 .  
  2. Schouten JP, McElgunn CJ, Waaijer R, Zwijnenburg D, Diepvens F, Pals G (2002-06-15). "Cuantificación relativa de 40 secuencias de ácidos nucleicos mediante amplificación de sondas dependiente de ligación multiplex" . Nucleic Acids Research . 30 (12): e57. doi : 10.1093/nar/gnf056 . ISSN 0305-1048 . PMC 117299. PMID 12060695 .   
  3. "Amplificación de sonda dependiente de ligación multiplex (MLPA)" . Bitesize Bio . 27 de diciembre de 2018. Consultado el 7 de junio de 2021 .
  4. Yau SC, Bobrow M, Mathew CG, Abbs SJ (1996). "Diagnóstico preciso de portadores de deleciones y duplicaciones en la distrofia muscular de Duchenne/Becker mediante análisis de dosis fluorescentes" . J. Med. Genet . 33 (7): 550– 558. doi : 10.1136/jmg.33.7.550 . PMC 1050661. PMID 8818939 .  
  5. Lista de artículos relacionados con MLPA archivados el 20 de febrero de 2007 en Wayback Machine
  6. Volikos E, Robinson J, Aittomaki K, Mecklin JP, Jarvinen H, Westerman AM, de Rooji FW, Vogel T, Moeslein G, Launonen V, Tomlinson IP, Silver AR, Aaltonen LA (2006). "Las deleciones exónicas y del gen completo LKB1 son una causa común del síndrome de Peutz-Jeghers" . J. Med. Genet . 43 (5): e18. doi : 10.1136/jmg.2005.039875 . PMC 2564523. PMID 16648371 .  
  7. 1 2 Procter M, Chou LS, Tang W, Jama M, Mao R (2006). "Diagnóstico molecular de los síndromes de Prader-Willi y Angelman mediante análisis de fusión específico de metilación y amplificación de sonda dependiente de ligación multiplex específica de metilación" (PDF) . Clin. Chem . 52 (7): 1276– 1283. doi : 10.1373/clinchem.2006.067603 . PMID 16690734 . 
  8. Wehner M, Mangold E, Sengteller M, Friedrichs N, Aretz S, Friedl W, Propping P, Pagenstecher C (2005). "Cáncer colorrectal hereditario no polipósico: dificultades en el cribado de deleciones en los genes MSH2 y MLH1" . Eur. J. Hum. Genet . 13 (8): 983–986 . doi : 10.1038/sj.ejhg.5201421 . PMID 15870828 . 
  9. ^ Wilting SM, Snijders PJ, Meijer GA, Ylstra B, Van den IJssel PR, Snijders AM, Albertson DG, Coffa J, Schouten JP, van de Wiel MA, Meijer CJ, Steenbergen RD (2006). "El aumento del número de copias de genes en el cromosoma 20q es frecuente tanto en los carcinomas de células escamosas como en los adenocarcinomas del cuello uterino". J. Pathol . 209 (2): 220– 230. doi : 10.1002/path.1966 . PMID 16538612 . S2CID 25427077 .  
  10. Introducción a MLPA
  11. Bunyan DJ, Eccles DM, Sillibourne J, Wilkins E, Thomas NS, Shea-Simonds J, Duncan PJ, Curtis CE, Robinson DO, Harvey JF, Cross NC (2004). "Análisis de dosis de genes de predisposición al cáncer mediante amplificación de sondas dependiente de ligación multiplex" . Br. J. Cancer . 91 (6): 1155– 1159. doi : 10.1038/sj.bjc.6602121 . PMC 2747696. PMID 15475941 .  
  12. Gerdes T, Kirchhoff M, Lind AM, Larsen GV, Schwartz M, Lundsteen C (2005). "Detección prenatal de aneuploidías asistida por ordenador para los cromosomas 13, 18, 21, X e Y basada en la amplificación de sondas dependiente de ligación múltiple (MLPA)" . Eur. J. Hum. Genet . 13 (2): 171– 175. doi : 10.1038/sj.ejhg.5201307 . PMID 15483643 . 
  13. ^ Hochstenbach R, Meijer J, van de Brug J, Vossebeld-Hoff I, Jansen R, van der Luijt RB, Sinke RJ, Page-Christiaens GC, Ploos van Amstel JK, de Pater JM (2005). "Detección rápida de aneuploidías cromosómicas en amniocitos no cultivados mediante amplificación de sonda dependiente de ligadura múltiple (MLPA)". Prenatal. Diagnóstico . 25 (11): 1032-1039. doi : 10.1002 / pd.1247 . PMID 16231311. S2CID 23214645 .  
  14. Illanes S, Avent N, Soothill PW (2005). "ADN fetal libre en plasma materno: un avance importante para vincular la genética fetal con la ecografía obstétrica" . Ultrasound Obstet. Gynecol . 25 (4): 317– 322. doi : 10.1002/uog.1881 . PMID 15789415 . 
  15. 1 2 Giner-Delgado, C., Villatoro, S., Lerga-Jaso, J., Gayà-Vidal, M., Oliva, M., Castellano, D., ... & Olalde, I. (2019). Impacto evolutivo y funcional de las inversiones polimórficas comunes en el genoma humano. Comunicaciones de la naturaleza , 10 (1), 1-14. https://doi.org/10.1038/s41467-019-12173-x
  16. Nygren AO, Ameziane N, Duarte HM, Vijzelaar RN, Waisfisz Q, Hess CJ, Schouten JP, Errami A (2005). "MLPA específica de metilación (MS-MLPA): detección simultánea de metilación de CpG y cambios en el número de copias de hasta 40 secuencias" . Nucleic Acids Res . 33 (14): e128. doi : 10.1093/nar/gni127 . PMC 1185609. PMID 16093568 .  
  • Otras aplicaciones de MLPA