Articulo de referencia

Mantenimiento de los minicromosomas

El complejo proteico de mantenimiento de minicromosomas ( MCM ) es una helicasa de ADN esencial para la replicación del ADN genómico. El MCM eucariota consta de seis productos g...

El complejo proteico de mantenimiento de minicromosomas ( MCM ) es una helicasa de ADN esencial para la replicación del ADN genómico. El MCM eucariota consta de seis productos génicos, Mcm2–7, que forman un heterohexámero. [ 1 ] [ 2 ] Como proteína crítica para la división celular, el MCM también es el objetivo de diversas vías de control, como los puntos de control de entrada y detención de la fase S. Tanto la carga como la activación de la helicasa MCM están estrictamente reguladas y acopladas a los ciclos de crecimiento celular. La desregulación de la función del MCM se ha relacionado con la inestabilidad genómica y diversos carcinomas. [ 3 ] [ 4 ]

Historia y estructura

Homología compartida por los miembros de la familia de proteínas Mcm2-7. [ 5 ] La homología entre los seis miembros de la familia se indica en negro. La homología de cada miembro entre especies se indica en color.

Las proteínas de mantenimiento de minicromosomas recibieron su nombre a partir de un cribado genético de levadura para mutantes defectuosos en la regulación del inicio de la replicación del ADN. [ 6 ] La lógica detrás de este cribado fue que si los orígenes de replicación se regulaban de manera análoga a los promotores de transcripción, donde los reguladores transcripcionales mostraban especificidad de promotor, entonces los reguladores de replicación también deberían mostrar especificidad de origen. Dado que los cromosomas eucariotas contienen múltiples orígenes de replicación y los plásmidos contienen solo uno, un defecto leve en estos reguladores tendría un efecto drástico en la replicación de plásmidos pero poco efecto en los cromosomas. En este cribado, se identificaron mutantes condicionales para la pérdida de plásmidos. En un cribado secundario, estos mutantes condicionales fueron seleccionados por defectos en el mantenimiento de plásmidos frente a una colección de plásmidos, cada uno con una secuencia de origen diferente. Se identificaron dos clases de mutantes mcm : aquellos que afectaban la estabilidad de todos los minicromosomas y otros que afectaban la estabilidad de solo un subconjunto de los minicromosomas. Los primeros eran mutantes defectuosos en la segregación cromosómica, como mcm16, mcm20 y mcm21. Entre la última clase de mutantes específicos de origen se encontraban mcm1, mcm2, mcm3, mcm5 y mcm10. Posteriormente, otros identificaron Mcm4, Mcm6 y Mcm7 en levaduras y otros eucariotas basándose en la homología con Mcm2p, Mcm3p y Mcm5p, ampliando la familia MCM a seis, posteriormente conocida como la familia Mcm2-7. [ 5 ] En las arqueas, el anillo heterohexamérico es reemplazado por un homohexamérico compuesto por un solo tipo de proteína mcm , lo que apunta a una historia de duplicación y diversificación génica. [ 7 ]

Mcm1 [ 8 ] [ 9 ] y Mcm10 [ 10 ] [ 11 ] también participan en la replicación del ADN, directa o indirectamente, pero no tienen homología de secuencia con la familia Mcm2-7.

Función en la iniciación y elongación de la replicación del ADN.

MCM2-7 es necesario tanto para la iniciación como para la elongación de la replicación del ADN; su regulación en cada etapa es una característica central de la replicación del ADN eucariota. [ 3 ] Durante la fase G1, los dos anillos Mcm2-7 cabeza con cabeza sirven como andamiaje para el ensamblaje de los complejos de iniciación de la replicación bidireccional en el origen de replicación. Durante la fase S, el complejo Mcm2-7 forma el núcleo catalítico de la helicasa Cdc45-MCM-GINS, el motor de desenrollamiento del ADN del replisoma.

Ensamblaje del complejo G1/prerreplicativo

La selección del sitio para los orígenes de replicación es llevada a cabo por el Complejo de Reconocimiento de Origen (ORC), un complejo de seis subunidades (Orc1-6). [ 12 ] [ 13 ] Durante la fase G1 del ciclo celular, Cdc6 es reclutado por ORC para formar una plataforma de lanzamiento para la carga de dos hexámeros Mcm2-7 cabeza con cabeza, también conocido como complejo de prereplicación (pre-RC). [ 14 ] Hay evidencia genética y bioquímica de que el reclutamiento del doble hexámero puede involucrar uno [ 15 ] o dos [ 16 ] ORC. El hexámero Mcm2-7 soluble forma una estructura flexible de anillo abierto levógira estabilizada por Cdt1 antes de su carga en la cromatina, [ 2 ] [ 17 ] uno a la vez. [ 18 ] La estructura del intermedio ORC-Cdc6-Cdt1-MCM (OCCM) formado después de la carga del primer heptámero Cdt1-Mcm2-7 indica que el dominio de hélice alada en las extensiones C-terminales (CTE) del complejo Mcm2-7 se ancla firmemente a las superficies creadas por la estructura de anillo ORC-Cdc6 alrededor del ADN de origen. [ 19 ] Se cree que la fusión de los dos hexámeros Mcm2-7 cabeza con cabeza se facilita por la eliminación de Cdt1, dejando los NTD de los dos hexámeros MCM flexibles para interacciones entre anillos. [ 20 ] [ 1 ] La carga de MCM2-7 en el ADN es un proceso activo que requiere hidrólisis de ATP tanto por Orc1-6 como por Cdc6. [ 21 ] Este proceso se denomina "Licencia de replicación" ya que es un requisito previo para la iniciación de la replicación del ADN en cada ciclo de división celular. [ 22 ] [ 23 ]

Inicio de G1 tardío/S temprano

En la fase G1 tardía/S temprana, el pre-RC se activa para el desenrollamiento del ADN por las quinasas dependientes de ciclinas (CDK) y DDK. Esto facilita la carga de factores de replicación adicionales (por ejemplo, Cdc45 , MCM10 , GINS y ADN polimerasas ) y el desenrollamiento del ADN en el origen. [ 3 ] Una vez que se completa la formación del pre-RC, Orc1-6 y Cdc6 ya no son necesarios para la retención de MCM2-7 en el origen, y son prescindibles para la replicación posterior del ADN.

Fase S/elongación

Al entrar en la fase S, la actividad de las CDK y de la quinasa dependiente de Dbf4 (DDK) Cdc7 promueve el ensamblaje de las horquillas de replicación , probablemente en parte mediante la activación de MCM2-7 para desenrollar el ADN. Tras la carga de la ADN polimerasa, comienza la replicación bidireccional del ADN.

Durante la fase S, Cdc6 y Cdt1 se degradan o inactivan para bloquear la formación adicional de pre-RC, y se produce la replicación bidireccional del ADN. Cuando la horquilla de replicación encuentra lesiones en el ADN, la respuesta del punto de control de la fase S ralentiza o detiene la progresión de la horquilla y estabiliza la asociación de MCM2-7 con la horquilla de replicación durante la reparación del ADN. [ 24 ]

Función en la concesión de licencias de replicación

El sistema de licencias de replicación actúa para asegurar que ninguna sección del genoma se replique más de una vez en un solo ciclo celular. [ 25 ]

La inactivación de al menos cinco de las seis subunidades MCM durante la fase S bloquea rápidamente la elongación en curso. Como mecanismo crítico para asegurar una sola ronda de replicación del ADN, la incorporación de complejos MCM2-7 adicionales a los pre-RC se inactiva por medios redundantes después del paso a la fase S. [ 26 ] 

La actividad de MCM2-7 también puede regularse durante la elongación. La pérdida de la integridad de la horquilla de replicación, un evento precipitado por daño en el ADN, secuencias de ADN inusuales o precursores de desoxirribonucleótidos insuficientes, puede conducir a la formación de roturas de doble cadena de ADN y reordenamientos cromosómicos. Normalmente, estos problemas de replicación activan un punto de control de la fase S que minimiza el daño genómico al bloquear la elongación y estabilizar físicamente las asociaciones proteína-ADN en la horquilla de replicación hasta que se soluciona el problema. Esta estabilización de la horquilla de replicación requiere la interacción física de MCM2-7 con Mrc1, Tof1 y Csm3 (complejo M/T/C). [ 27 ] En ausencia de estas proteínas, el desenrollamiento del ADN bicatenario y el movimiento del replisoma impulsados ​​por MCM2-7 continúan, pero la síntesis de ADN se detiene. Al menos parte de esta detención se debe a la disociación de la polimerasa ε de la horquilla de replicación. [ 27 ]

Estructura bioquímica

Cada subunidad en la estructura MCM contiene dos grandes dominios N- y C-terminales. El dominio N-terminal consta de tres subdominios pequeños y parece utilizarse principalmente para la organización estructural. [ 28 ] [ 1 ] El dominio N puede coordinarse con el dominio helicasa AAA + C-terminal de una subunidad vecina a través de un bucle largo y conservado. [ 29 ] [ 1 ] Se ha demostrado que este bucle conservado, denominado bucle de control alostérico, desempeña un papel en la regulación de las interacciones entre las regiones N- y C-terminales al facilitar la comunicación entre los dominios en respuesta a la hidrólisis de ATP [10]. El dominio N también establece la direccionalidad 3′→5′ in vitro de MCM. [ 30 ] [ 31 ] 

Modelos de desenrollamiento del ADN

Respecto al mecanismo físico mediante el cual una helicasa hexamérica desenrolla el ADN, se han propuesto dos modelos basados ​​en datos in vivo e in vitro. En el modelo "estérico", la helicasa se desplaza firmemente a lo largo de una hebra de ADN, desplazando físicamente la hebra complementaria. En el modelo de "bomba", pares de helicasas hexaméricas desenrollan el ADN bicatenario, ya sea separándolo mediante torsión o expulsándolo a través de canales en el complejo.

Modelo estérico

El modelo estérico plantea la hipótesis de que la helicasa rodea el ADN bicatenario y, tras la fusión local del ADN bicatenario en el origen, se desplaza lejos del origen, arrastrando una "cuña" proteínica rígida (ya sea parte de la propia helicasa u otra proteína asociada) que separa las hebras de ADN. [ 32 ]

Modelo de bomba

El modelo de bomba postula que múltiples helicasas se cargan en los orígenes de replicación, se desplazan unas a otras y, de alguna manera, terminan anclándose en su lugar. Luego, rotan el ADN bicatenario en direcciones opuestas, lo que resulta en el desenrollamiento de la doble hélice en la región intermedia. [ 33 ] También se ha propuesto que el modelo de bomba se limite a la fusión del ADN del origen mientras los complejos Mcm2-7 aún están anclados en el origen justo antes del inicio de la replicación. [ 1 ]

Papel en el cáncer

Se ha demostrado que varios MCM promueven la proliferación celular in vitro e in vivo, especialmente en ciertos tipos de líneas celulares cancerosas. La asociación entre los MCM y la proliferación en líneas celulares cancerosas se atribuye principalmente a su capacidad para potenciar la replicación del ADN. Se han demostrado las funciones de MCM2 y MCM7 en la proliferación celular en diversos contextos celulares e incluso en muestras humanas. [ 26 ] 

Se ha demostrado que MCM2 se expresa con frecuencia en células pulmonares premalignas proliferantes. Su expresión se asoció con células con mayor potencial de proliferación en epitelio escamoso no displásico, histiocitomas fibrosos malignos y carcinoma endometrial, mientras que la expresión de MCM2 también se correlacionó con un mayor índice mitótico en muestras de cáncer de mama. [ 34 ] 

De manera similar, numerosos estudios de investigación han demostrado la relación entre la expresión de MCM7 y la proliferación celular. La expresión de MCM7 se correlacionó significativamente con la expresión de Ki67 en coriocarcinomas, cáncer de pulmón, neoplasia urotelial papilar, cáncer de esófago y cáncer de endometrio. Su expresión también se asoció con un índice proliferativo más elevado en la neoplasia intraepitelial prostática y el cáncer. [ 35 ]

Véase también

Referencias

  1. ^ Li N , Zhai Y, Zhang Y, Li W, Yang M, Lei J, Tye BK, Gao N (agosto de 2015 ) . "Estructura del complejo MCM eucariota a 3,8 Å". Naturaleza . 524 (7564): 186– 91. Bibcode : 2015Natur.524..186L . doi : 10.1038/naturaleza14685 . PMID 26222030 . S2CID 4468690 .  
  2. 1 2 Zhai Y, Cheng E, Wu H, Li N, Yung PY, Gao N, Tye BK (marzo de 2017). "Estructura de anillo abierto del complejo Cdt1-Mcm2-7 como precursor del doble hexámero MCM". Nature Structural & Molecular Biology . 24 (3): 300– 308. doi : 10.1038/nsmb.3374 . PMID 28191894. S2CID 3929807 .  
  3. 1 2 3 Bochman ML, Schwacha A (diciembre de 2009). "El complejo Mcm: desentrañando el mecanismo de una helicasa replicativa" . Microbiology and Molecular Biology Reviews . 73 (4): 652– 83. doi : 10.1128/mmbr.00019-09 . PMC 2786579. PMID 19946136 .  
  4. Shima N, Alcaraz A, Liachko I, Buske TR, Andrews CA, Munroe RJ, Hartford SA, Tye BK, Schimenti JC (enero de 2007). "Un alelo viable de Mcm4 causa inestabilidad cromosómica y adenocarcinomas mamarios en ratones". Nature Genetics . 39 (1): 93–8 . doi : 10.1038/ng1936 . PMID 17143284. S2CID 11433033 .  
  5. 1 2 Tye BK (junio de 1999). "Proteínas MCM en la replicación del ADN". Annual Review of Biochemistry . 68 (1): 649– 86. doi : 10.1146/annurev.biochem.68.1.649 . PMID 10872463 . 
  6. Maine GT, Sinha P, Tye BK (marzo de 1984). " Mutantes de S. cerevisiae defectuosos en el mantenimiento de minicromosomas" . Genetics . 106 (3): 365–85 . doi : 10.1093/genetics/106.3.365 . PMC 1224244. PMID 6323245 .  
  7. Ausiannikava D, Allers T (enero de 2017). " Diversidad de la replicación del ADN en las arqueas" . Genes . 8 (2): 56. doi : 10.3390/genes8020056 . PMC 5333045. PMID 28146124 .  
  8. Passmore S, Elble R, Tye BK (julio de 1989). "Una proteína involucrada en el mantenimiento de minicromosomas en levaduras se une a un potenciador transcripcional conservado en eucariotas" . Genes & Development . 3 (7): 921–35 . doi : 10.1101/gad.3.7.921 . PMID 2673922 . 
  9. Chang VK, Fitch MJ, Donato JJ, Christensen TW, Merchant AM, Tye BK (febrero de 2003). "Mcm1 se une a los orígenes de replicación" . The Journal of Biological Chemistry . 278 (8): 6093–100 . doi : 10.1074/jbc.M209827200 . PMID 12473677 . 
  10. Merchant AM, Kawasaki Y, Chen Y, Lei M, Tye BK (junio de 1997). "Una lesión en el factor de iniciación de la replicación del ADN Mcm10 induce la pausa de las horquillas de elongación a través de los orígenes de replicación cromosómica en Saccharomyces cerevisiae" . Biología molecular y celular . 17 (6): 3261–71 . doi : 10.1128/MCB.17.6.3261 . PMC 232179. PMID 9154825 .  
  11. Homesley L, Lei M, Kawasaki Y, Sawyer S, Christensen T, Tye BK (abril de 2000). "Mcm10 y el complejo MCM2-7 interactúan para iniciar la síntesis de ADN y liberar factores de replicación de los orígenes" . Genes & Development . 14 (8): 913–26 . doi : 10.1101/gad.14.8.913 . PMC 316538. PMID 10783164 .  
  12. Bell SP, Stillman B (mayo de 1992). "Reconocimiento dependiente de ATP de los orígenes eucariotas de la replicación del ADN por un complejo multiproteico". Nature . 357 ( 6374): 128– 34. Bibcode : 1992Natur.357..128B . doi : 10.1038/357128a0 . PMID 1579162. S2CID 4346767 .  
  13. Li N, Lam WH, Zhai Y, Cheng J, Cheng E, Zhao Y, Gao N, Tye BK (julio de 2018). "Estructura del complejo de reconocimiento del origen unido al origen de replicación del ADN". Nature . 559 ( 7713): 217– 222. Bibcode : 2018Natur.559..217L . doi : 10.1038/s41586-018-0293-x . PMID 29973722. S2CID 49577101 .  
  14. Diffley JF, Cocker JH, Dowell SJ, Harwood J, Rowley A (1995). "Ensamblaje gradual de complejos de iniciación en los orígenes de replicación de la levadura en gemación durante el ciclo celular" . Journal of Cell Science. Suplemento . 19 : 67–72 . doi : 10.1242/jcs.1995.supplement_19.9 . PMID 8655649 . 
  15. Ticau S, Friedman LJ, Ivica NA, Gelles J, Bell SP (abril de 2015). "Estudios de molécula única sobre la activación del origen revelan mecanismos que aseguran la carga bidireccional de la helicasa" . Cell . 161 ( 3): 513– 525. doi : 10.1016/j.cell.2015.03.012 . PMC 4445235. PMID 25892223 .  
  16. Coster G, Diffley JF (julio de 2017). " La replicación bidireccional del ADN eucariota se establece mediante la carga cuasi-simétrica de la helicasa" . Science . 357 (6348): 314–318 . Bibcode : 2017Sci...357..314C . doi : 10.1126/science.aan0063 . PMC 5608077. PMID 28729513 .  
  17. Frigola J, He J, Kinkelin K, Pye VE, Renault L, Douglas ME, Remus D, Cherepanov P, Costa A, Diffley JF (junio de 2017). "Cdt1 estabiliza un anillo MCM abierto para la carga de helicasa" . Nature Communications . 8 15720. Bibcode : 2017NatCo...815720F . doi : 10.1038/ncomms15720 . PMC 5490006. PMID 28643783 .  
  18. Ticau S, Friedman LJ, Champasa K, Corrêa IR, Gelles J, Bell SP (marzo de 2017). "Mecanismo y sincronización del cierre del anillo Mcm2-7 durante la licencia del origen de replicación del ADN" . Nature Structural & Molecular Biology . 24 (3): 309– 315. doi : 10.1038/nsmb.3375 . PMC 5336523. PMID 28191892 .  
  19. Yuan Z, Riera A, Bai L, Sun J, Nandi S, Spanos C, Chen ZA, Barbon M, Rappsilber J , Stillman B, Speck C, Li H (marzo de 2017). "Base estructural de la carga de la helicasa replicativa Mcm2-7 por ORC-Cdc6 y Cdt1" . Nature Structural & Molecular Biology . 24 (3): 316– 324. doi : 10.1038/nsmb.3372 . PMC 5503505. PMID 28191893 .  
  20. Zhai Y, Li N, Jiang H, Huang X, Gao N, Tye BK (julio de 2017). "Funciones únicas de las subunidades MCM no idénticas en la autorización de la replicación del ADN" . Molecular Cell . 67 (2): 168– 179. doi : 10.1016/j.molcel.2017.06.016 . PMID 28732205 . 
  21. Randell JC, Bowers JL, Rodríguez HK, Bell SP (enero de 2006). "La hidrólisis secuencial de ATP por Cdc6 y ORC dirige la carga de la helicasa Mcm2-7" . Molecular Cell . 21 (1): 29–39 . doi : 10.1016/j.molcel.2005.11.023 . PMID 16387651 . 
  22. Tye BK (mayo de 1994). "Las proteínas MCM2-3-5: ¿son factores de licencia de replicación?". Trends in Cell Biology . 4 (5): 160– 6. doi : 10.1016/0962-8924(94)90200-3 . PMID 14731643 . 
  23. Thömmes P, Kubota Y, Takisawa H, Blow JJ (junio de 1997). "El componente RLF-M del sistema de licencia de replicación forma complejos que contienen los seis polipéptidos MCM/P1" . The EMBO Journal . 16 (11): 3312–9 . doi : 10.1093/ emboj /16.11.3312 . PMC 1169947. PMID 9214646 .  
  24. Kamimura Y, Tak YS, Sugino A, Araki H (abril de 2001). "Sld3, que interactúa con Cdc45 (Sld4), funciona para la replicación del ADN cromosómico en Saccharomyces cerevisiae" . The EMBO Journal . 20 (8): 2097–107 . doi : 10.1093/ emboj /20.8.2097 . PMC 125422. PMID 11296242 .  
  25. Tada S, Blow JJ (agosto de 1998). " El sistema de licencias de replicación" . Química Biológica . 379 ( 8–9 ): 941–9 . doi : 10.1515/bchm.1998.379.8-9.941 . PMC 3604913. PMID 9792427 .  
  26. 1 2 Neves H, Kwok HF (agosto de 2017). "En la salud y en la enfermedad: las múltiples funciones de las proteínas de mantenimiento de los minicromosomas". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Reviews on Cancer . 1868 (1): 295– 308. doi : 10.1016/j.bbcan.2017.06.001 . PMID 28579200 . 
  27. 1 2 Katou Y, Kanoh Y, Bando M, Noguchi H, Tanaka H, ​​Ashikari T, Sugimoto K, Shirahige K (agosto de 2003). "Las proteínas del punto de control de la fase S Tof1 y Mrc1 forman un complejo estable de pausa de la replicación". Nature . 424 (6952): 1078– 83. Bibcode : 2003Natur.424.1078K . doi : 10.1038/nature01900 . PMID 12944972 . S2CID 4330982 .  
  28. Liu W, Pucci B, Rossi M, Pisani FM, Ladenstein R (junio de 2008). "Análisis estructural del dominio N-terminal de la proteína MCM de Sulfolobus solfataricus" . Nucleic Acids Research . 36 (10): 3235–43 . doi : 10.1093 / nar/gkn183 . PMC 2425480. PMID 18417534 .  
  29. Brewster AS, Chen XS (junio de 2010). "Perspectivas sobre el mecanismo funcional de MCM: lecciones aprendidas del complejo MCM de las arqueas" . Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology . 45 (3): 243– 56. doi : 10.3109/10409238.2010.484836 . PMC 2953368. PMID 20441442 .  
  30. Barry ER, McGeoch AT, Kelman Z, Bell SD (2007-02-01). "Archaeal MCM has separable processivity, substrate choice and helicase domains" . Nucleic Acids Research . 35 (3): 988– 98. doi : 10.1093/nar/gkl1117 . PMC 1807962. PMID 17259218 .  
  31. Georgescu R, Yuan Z, Bai L, de Luna Almeida Santos R, Sun J, Zhang D, et al. (enero de 2017). "Estructura de la helicasa CMG eucariota en una horquilla de replicación e implicaciones para la arquitectura del replisoma y la iniciación del origen" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 114 (5): E697– E706. Bibcode : 2017PNAS..114E.697G . doi : 10.1073/pnas.1620500114 . PMC 5293012. PMID 28096349 .   
  32. Patel SS, Picha KM (2000-06-01). "Estructura y función de las helicasas hexaméricas". Annual Review of Biochemistry . 69 (1): 651– 97. doi : 10.1146/annurev.biochem.69.1.651 . PMID 10966472 . 
  33. Laskey RA, Madine MA (enero de 2003). "Un modelo de bombeo rotatorio para la función helicasa de las proteínas MCM a distancia de las horquillas de replicación" . EMBO Reports . 4 (1): 26– 30. doi : 10.1038/sj.embor.embor706 . PMC 1315806. PMID 12524516 .  
  34. Gonzalez MA, Pinder SE, Callagy G, Vowler SL, Morris LS, Bird K, Bell JA, Laskey RA, Coleman N (diciembre de 2003). "La proteína de mantenimiento de minicromosomas 2 es un fuerte marcador pronóstico independiente en el cáncer de mama". Journal of Clinical Oncology . 21 (23): 4306– 13. doi : 10.1200/jco.2003.04.121 . PMID 14645419 . 
  35. Guan B, Wang X, Yang J, Zhou C, Meng Y (agosto de 2015). "El componente 7 del complejo de mantenimiento de minicromosomas tiene un papel importante en la invasión de la neoplasia urotelial papilar" . Oncology Letters . 10 (2): 946– 950. doi : 10.3892/ol.2015.3333 . PMC 4509410. PMID 26622601 .  
  36. Cortez D, Glick G, Elledge SJ (julio de 2004). "Las proteínas de mantenimiento de minicromosomas son objetivos directos de las quinasas de punto de control ATM y ATR" . Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 101 (27): 10078– 83. doi : 10.1073/pnas.0403410101 . PMC 454167. PMID 15210935 .  
  • Humphries C (12 de enero de 2001). "Un burócrata molecular vinculado al proceso de aprobación de la replicación" . Focus . Facultades de Medicina, Odontología y Salud Pública de Harvard. Archivado del original el 31 de agosto de 2007. Consultado el 3 de octubre de 2008 .
  • Estructuras macromoleculares de MCM en el Banco de Datos de Microscopía Electrónica (EMDB)