Articulo de referencia

Chispas de calcio

Una chispa de calcio es la liberación microscópica de calcio ( Ca²⁺ ) desde un reservorio conocido como retículo sarcoplásmico (RS) , ubicado dentro de las células musculares . ...

Una chispa de calcio es la liberación microscópica de calcio ( Ca²⁺ ) desde un reservorio conocido como retículo sarcoplásmico (RS) , ubicado dentro de las células musculares . [ 1 ] Esta liberación ocurre a través de un canal iónico dentro de la membrana del RS , conocido como receptor de rianodina (RyR) , que se abre al activarse. [ 2 ] Este proceso es importante ya que ayuda a mantener la concentración de Ca²⁺ dentro de la célula . También inicia la contracción muscular en los músculos esqueléticos y cardíacos y la relajación muscular en los músculos lisos . Las chispas de Ca²⁺ son importantes en fisiología ya que muestran cómo el Ca²⁺ puede usarse a nivel subcelular para señalizar cambios locales, conocidos como control local, [ 3 ] así como cambios en toda la célula.

Activación

Como se mencionó anteriormente, las chispas de Ca 2+ dependen de la apertura de los receptores de rianodina, de los cuales existen tres tipos:

  • Tipo 1 : se encuentra principalmente en el músculo esquelético.
  • Tipo 2 : se encuentra principalmente en el corazón.
  • Tipo 3 : se encuentra en el músculo liso y las neuronas.

La apertura del canal permite que el Ca 2+ pase del SR al interior de la célula. Esto aumenta la concentración local de Ca 2+ alrededor del RyR en un factor de 10. [ 4 ] Las chispas de calcio pueden ser provocadas o espontáneas, como se describe a continuación.

Figura 1: Chispa de calcio provocada en una célula del músculo cardíaco.

Evocado

Los impulsos eléctricos, conocidos como potenciales de acción , viajan a lo largo de la membrana celular (sarcolema) de las células musculares . [ 5 ] En el sarcolema de las células musculares lisas se encuentran receptores llamados receptores de dihidropiridina (DHPR). Sin embargo, en las células musculares esqueléticas y cardíacas, estos receptores se localizan dentro de estructuras conocidas como túbulos T, que son extensiones de la membrana plasmática que penetran profundamente en la célula (véase la figura 1). [ 6 ] [ 7 ] Estos DHPR se encuentran directamente opuestos a los receptores de rianodina , ubicados en el retículo sarcoplásmico [ 8 ] y la activación, por el potencial de acción, provoca que los DHPR cambien de forma. [ 9 ]

En el músculo cardíaco y liso , la activación del DHPR da como resultado la formación de un canal iónico . [ 10 ] Esto permite que el Ca²⁺ pase al interior de la célula , aumentando la concentración local de Ca²⁺ alrededor del RyR. Cuando cuatro moléculas de Ca²⁺ se unen al RyR, este se abre, lo que resulta en una mayor liberación de Ca²⁺ del retículo sarcoplásmico (RS). Este proceso, que utiliza Ca²⁺ para activar la liberación de Ca²⁺ del RS , se conoce como liberación de calcio inducida por calcio (CICR) . [ 11 ]

Sin embargo, en el músculo esquelético, el DHPR entra en contacto con el RyR. Por lo tanto, el cambio de forma del DHPR activa directamente el RyR, sin necesidad de que el Ca²⁺ entre primero en la célula. Esto provoca la apertura del RyR, permitiendo la liberación de Ca²⁺ del retículo sarcoplásmico (RS). [ 12 ]

Espontáneo

Las chispas de Ca²⁺ también pueden ocurrir en células en reposo (es decir, células que no han sido estimuladas por un potencial de acción). Esto ocurre aproximadamente 100 veces por segundo en cada célula [ 13 ] y es el resultado de que la concentración de Ca²⁺ en reposo sea lo suficientemente alta como para iniciar la liberación de Ca²⁺ inducida por calcio (CICR) local. También se cree que un aumento de Ca²⁺ dentro del retículo sarcoplásmico (RS) se une a sitios sensibles al Ca²⁺ en el interior del receptor de rianodina (RyR), lo que aumenta la probabilidad de que el canal se abra. Además, una proteína llamada calsecuestrina (que se encuentra dentro del RS) se disocia del RyR cuando la concentración de calcio es alta, lo que permite nuevamente que el canal se abra (véase el retículo sarcoplásmico para más detalles). De manera similar, se ha demostrado que una disminución en la concentración de Ca²⁺ dentro del RS también reduce la sensibilidad del RyR. Se cree que esto se debe a que la calsecuestrina se une con mayor fuerza al RyR, impidiendo su apertura y disminuyendo la probabilidad de una chispa espontánea [ 14 ] .

Calcio después de la liberación

Hay aproximadamente 10 000 grupos de receptores de rianodina dentro de una sola célula cardíaca, y cada grupo contiene alrededor de 100 receptores de rianodina. [ 13 ] Durante una chispa espontánea, cuando se libera Ca²⁺ del SR, el Ca²⁺ se difunde por toda la célula . Como los RyR en el corazón se activan por el Ca²⁺ , el movimiento del Ca²⁺ liberado durante una chispa espontánea puede activar los RyR vecinos dentro del mismo grupo. Sin embargo, generalmente no hay suficiente Ca²⁺ presente en una sola chispa para alcanzar un grupo de receptores vecino . [ 13 ] El calcio, sin embargo, puede enviar una señal de vuelta al DHPR, lo que provoca su cierre y evita una mayor entrada de calcio como una forma de retroalimentación negativa para la estabilidad a largo plazo. [ 15 ]

Un aumento en la concentración de Ca²⁺ dentro de la célula o la producción de una chispa más grande pueden provocar la liberación de una cantidad de calcio suficiente como para que el grupo vecino se active por la primera chispa. Esto se conoce como activación de chispa inducida por chispa y puede generar una onda de liberación de calcio (Ca²⁺) que se propaga por toda la célula. [ 13 ]

Durante las chispas de Ca²⁺ evocadas , todos los grupos de receptores de rianodina en la célula se activan casi simultáneamente. [ 16 ] Esto produce un aumento en la concentración de Ca²⁺ en toda la célula (no solo localmente) y se conoce como transitorio de Ca²⁺ de célula completa . Este Ca²⁺ se une a una proteína llamada troponina , iniciando la contracción a través de un grupo de proteínas conocidas como miofilamentos. [ 17 ]

En las células del músculo liso , el Ca²⁺ liberado durante una chispa se utiliza para la relajación muscular. Esto se debe a que el Ca²⁺ que entra en la célula a través del DHPR en respuesta al potencial de acción estimula tanto la contracción muscular como la liberación de calcio del retículo sarcoplásmico (RS). El Ca²⁺ liberado durante la chispa activa otros dos canales iónicos en la membrana. Un canal permite la salida de iones de potasio , mientras que el otro permite la salida de iones de cloruro . Como resultado de este movimiento de iones , el potencial de membrana se vuelve más negativo. Esto desactiva el DHPR (que se activó por el potencial de membrana positivo producido por el potencial de acción), provocando su cierre e interrumpiendo el flujo de Ca²⁺ hacia el interior de la célula, lo que conduce a la relajación. [ 18 ]

Terminación

El mecanismo por el cual finaliza la liberación de Ca 2+ del SR aún no se comprende completamente. Las principales teorías actuales se describen a continuación: [ 19 ]

Agotamiento local de Ca 2+ del retículo sarcoplásmico

Esta teoría sugiere que durante una chispa de calcio, a medida que el calcio fluye fuera del SR, la concentración de Ca 2+ dentro de la región local del SR se vuelve demasiado baja para mantener la liberación continua. Sin embargo, no se creía que este fuera el caso para las chispas espontáneas, ya que la liberación total durante una chispa de Ca 2+ es pequeña en comparación con el contenido total de Ca 2+ del SR y los investigadores han producido chispas que duran más de 200 milisegundos, por lo que muestran que todavía queda Ca 2+ dentro del SR después de una chispa "normal" (200 ms). [ 20 ] Sin embargo, el agotamiento local en el SR de unión puede ser mucho mayor de lo que se pensaba anteriormente (ver [ 21 ] [ 22 ] ) y esto lleva a que el flujo local de Ca 2+ pueda mantener la CICR local. Esta pérdida de fuerza local de CICR es la reversión del proceso de activación normal en CICR y efectivamente se acumula hasta que el flujo de liberación se reduce al punto en que solo unos pocos RyR permanecen abiertos en un momento dado y puede tener lugar una atrición estocástica (ver más abajo) [ 22 ] [ 23 ] Sin embargo, durante la activación de un gran número de receptores de rianodina, como es el caso durante la liberación de Ca 2+ evocada eléctricamente , todo el SR está aproximadamente un 50% agotado de Ca 2+ y este mecanismo desempeñará un papel importante en el reajuste de la liberación.

Desgaste estocástico

A pesar de su nombre complejo, esta idea simplemente sugiere que todos los receptores de rianodina en un grupo (y los receptores de dihidropiridina asociados) se cierran aleatoriamente al mismo tiempo. Esto no solo impediría la liberación de calcio del SR, sino que también detendría el estímulo para reiniciar la liberación de calcio (es decir, el flujo de calcio a través del DHPR). [ 24 ] Sin embargo, debido a la cantidad de RyR en un grupo, este mecanismo parece poco probable que pueda iniciar la terminación de la liberación, ya que existe una probabilidad muy pequeña de que todos se cierren exactamente al mismo tiempo. [ 19 ]

Inactivación/adaptación

Esta teoría sugiere que, tras la activación del RyR y la posterior liberación de Ca²⁺ , el canal se cierra brevemente para recuperarse. Durante este tiempo, o bien el canal no puede reabrirse, incluso en presencia de calcio (es decir, el RyR está inactivado), o bien puede reabrirse, pero se requiere más calcio de lo habitual para activarlo (es decir, el RyR se encuentra en una fase de adaptación). [ 25 ] Esto implicaría que, uno a uno, los RyR se cerrarían, poniendo fin así a la chispa. [ 24 ]

Teoría del clúster pegajoso

Esta teoría sugiere que los RyR pueden comunicar sus estados abierto y cerrado a través del clúster, quizás mediante su conformación física. [ 26 ] La comunicación física ahora parece improbable después de que las micrografías electrónicas mostraron que pocos RyR realmente se tocan entre sí. [ 27 ]

Descubrimiento

Las chispas espontáneas de Ca 2+ fueron descubiertas en células del músculo cardíaco de ratas en 1992 por Peace Cheng y Mark B. Cannell en el laboratorio de Jon Lederer en la Universidad de Maryland, Baltimore, EE. UU. [ 1 ].

Inicialmente, la revista científica Nature rechazó la idea , ya que sus revisores consideraron que las chispas eran consecuencia de la metodología (es decir, eran artefactos) y, por lo tanto, no se producirían de forma natural en el organismo. Sin embargo, pronto se reconoció su importancia fundamental para la fisiología muscular , desempeñando un papel central en el acoplamiento excitación-contracción.

El descubrimiento fue posible gracias a las mejoras en los microscopios confocales . Esto permitió detectar la liberación de Ca²⁺ , que se evidenció mediante una sustancia conocida como fluo-3 , la cual hizo que el Ca²⁺ fuera detectable por fluorescencia. Las "chispas" de Ca²⁺ recibieron ese nombre debido a la naturaleza espontánea y localizada de la liberación de Ca²⁺, así como al hecho de que constituyen el evento inicial del acoplamiento excitación-contracción .

Detección y análisis

Debido a la importancia de las chispas de Ca 2+ para explicar las propiedades de activación de los receptores de rianodina in situ (dentro del cuerpo), muchos estudios se han centrado en mejorar su detectabilidad [ 28 ] [ 29 ] con la esperanza de que, al detectar de forma precisa y fiable todos los eventos de chispas de Ca 2+ , sus propiedades puedan ayudarnos a explicar cómo se regula la contracción de las células musculares.

Véase también

Referencias

  1. 1 2 Cheng, H.; Lederer, WJ; Cannell, MB (1993). "Chispas de calcio: eventos elementales subyacentes al acoplamiento excitación-contracción en el músculo cardíaco". Science . 262 (5134): 740– 744. Bibcode : 1993Sci...262..740C . doi : 10.1126/science.8235594 . PMID 8235594 . 
  2. Lanner, JT; Georgiou, DK; Joshi, AD; Hamilton, SL (noviembre de 2010). "Receptores de rianodina: estructura, expresión, detalles moleculares y función en la liberación de calcio" . Cold Spring Harbor Perspectives in Biology . 2 (11) a003996. Bibcode : 2010CSHPB...203996L . doi : 10.1101/cshperspect.a003996 . ISSN 1943-0264 . PMC 2964179. PMID 20961976 .   
  3. Cannell, MB; Kong, Cherrie HT (febrero de 2012). "Control local en el acoplamiento E-C cardíaco" . Journal of Molecular and Cellular Cardiology . 52 (2): 298–303 . doi : 10.1016/j.yjmcc.2011.04.014 . PMID 21586292 . 
  4. Jafri, M Saleet; Ullah, Aman; Hoang-Trong, Tuan (octubre de 2015). "Chispas de calcio en el corazón: dinámica y regulación" . Research and Reports in Biology . 6 : 203–214 . doi : 10.2147/RRB.S61495 . ISSN 1179-7274 . PMC 4871623. PMID 27212876 .   
  5. Lodish, Harvey F. (2021). «El potencial de acción y la conducción de impulsos eléctricos». Biología celular molecular (9.ª ed.). Austin: Macmillan Learning. ISBN  978-1-319-20852-3.
  6. Brette, F.; Orchard, C. (2003). "Función de los túbulos T en los miocitos cardíacos de mamíferos" . Circulation Research . 92 (11): 1182– 92. CiteSeerX 10.1.1.334.2517 . doi : 10.1161/01.res.0000074908.17214.fd . PMID 12805236 .  
  7. Cheng, Heping; Lederer, WJ (2008-10-01). "Chispas de calcio". Physiological Reviews . 88 (4): 1491– 1545. doi : 10.1152/physrev.00030.2007 . ISSN 0031-9333 . PMID 18923188 .  
  8. Scriven, DRL; Dan, P.; Moore, EDW (2000). "Distribución de proteínas implicadas en el acoplamiento excitación-contracción en miocitos ventriculares de rata" . Biophys . J. 79 ( 5): 2682– 2691. Bibcode : 2000BpJ....79.2682S . doi : 10.1016/s0006-3495(00)76506-4 . PMC 1301148. PMID 11053140 .  
  9. Araya, R.; Liberona, J.; Cárdenas, J.; Riveros, N.; Estrada, M.; Powell, J.; Carrasco, M.; Jaimovich, E. (2003). "Receptores de dihidropiridina como sensores de voltaje para una señal de calcio lenta mediada por IP3R evocada por despolarización en células de músculo esquelético" . The Journal of General Physiology . 121 (1): 3– 16. doi : 10.1085/jgp.20028671 . PMC 2217318. PMID 12508050 .  
  10. Kotlikoff, M (2003). "Liberación de calcio inducida por calcio en el músculo liso: El caso del acoplamiento débil". Progress in Biophysics and Molecular Biology . 83 (3): 171– 91. doi : 10.1016/s0079-6107(03)00056-7 . PMID 12887979 . 
  11. Fabiato, A (1983). "Liberación de calcio inducida por calcio del retículo sarcoplásmico cardíaco". Am. J. Physiol . 245 (1): C1– C14. doi : 10.1152/ajpcell.1983.245.1.c1 . PMID 6346892 . 
  12. Meissner, G.; Lu, X. (1995). "Interacciones del receptor de dihidropiridina-receptor de rianodina en el acoplamiento excitación-contracción del músculo esquelético". Bioscience Reports . 15 (5): 399– 408. doi : 10.1007/bf01788371 . PMID 8825041. S2CID 32810845 .  
  13. 1 2 3 4 Cheng, H.; Lederer, W. (2008). "Chispas de calcio". Physiological Reviews . 88 (4): 1491– 545. doi : 10.1152/physrev.00030.2007 . PMID 18923188 . 
  14. Bassani, JW; Yuan, W.; Bers, DM (1995-05-01). "La liberación fraccionada de Ca del SR está regulada por el Ca desencadenante y el contenido de Ca del SR en los miocitos cardíacos". American Journal of Physiology. Cell Physiology . 268 (5): C1313– C1319. doi : 10.1152/ajpcell.1995.268.5.c1313 . ISSN 0363-6143 . PMID 7762626 .  
  15. Grantham, CJ; Cannell, MB (1996). "Influjo de Ca2+ durante el potencial de acción cardíaco en miocitos ventriculares de cobaya" . Circulation Research . 79 (2): 194– 200. doi : 10.1161/01.RES.79.2.194 . ISSN 0009-7330 . PMID 8755995 .  
  16. Cannell, MB; Cheng, H.; Lederer, WJ (1994). "No uniformidades espaciales en [ Ca2+ ] i durante el acoplamiento excitación-contracción en miocitos cardíacos" . Biophysical Journal . 67 (5): 1942– 1956. Bibcode : 1994BpJ....67.1942C . doi : 10.1016/ S0006-3495 (94)80677-0 . PMC 1225569. PMID 7858131 .  
  17. Herzberg, O.; Moult, J.; James, M. (1986). "Unión del calcio a la troponina C del músculo esquelético y la regulación de la contracción muscular". En David Evered; Julie Whelan (eds.). Simposio 122 de la Fundación Ciba - El calcio y la célula . Simposio de la Fundación Ciba de 1985. Simposios de la Fundación Novartis. Vol. 122. págs. 120–44 . doi : 10.1002/9780470513347.ch8 . ISBN   978-0-470-51334-7. PMID 3792134 . 
  18. Webb, R (2003). "Contracción y relajación del músculo liso". Advances in Physiology Education . 27 (4): 201– 6. doi : 10.1152/advances.2003.27.4.201 . PMID 14627618 . 
  19. 1 2 Cannell, Mark B.; Kong, Cherrie HT (2017-09-04). "Apagando la chispa: Terminación de CICR en el espacio submicroscópico de la díada" . Journal of General Physiology . 149 (9): 837– 845. doi : 10.1085/jgp.201711807 . ISSN 0022-1295 . PMC 5583711. PMID 28798280 .   
  20. Bers, DM (2002). "Acoplamiento excitación-contracción cardíaca". Nature . 415 (6868): 198– 205. Bibcode : 2002Natur.415..198B . ​​doi : 10.1038 / 415198a . PMID 11805843. S2CID 4337201 .  
  21. Kong CHT, Laver DR, Cannell MB (2013). "Extracción de flujos de Ca submicroscópicos a partir de imágenes de indicadores fluorescentes borrosas y ruidosas con un enfoque de ajuste de modelo detallado" . PLOS Comput Biol . 9 (2): e1002931–7. Bibcode : 2013PLSCB...9E2931K . doi : 10.1371/journal.pcbi.1002931 . PMC 3585382. PMID 23468614 .  {{cite journal}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  22. 1 2 Laver, DR; Kong, CHT; Imtiaz, MS; Cannell, MB (2013). "Terminación de la liberación de calcio inducida por calcio mediante la disminución de la inducción: una propiedad emergente de la activación estocástica del canal y la arquitectura a escala molecular" . Journal of Molecular and Cellular Cardiology . 54 : 98–100 . doi : 10.1016/j.yjmcc.2012.10.009 . ISSN 0022-2828 . PMID 23123322 .  
  23. Gillespie, Dirk; Fill, Michael (2013). " Desgaste pernicioso y control de la corriente CICR inter-RyR2 en el músculo cardíaco" . Journal of Molecular and Cellular Cardiology . 58 : 53–58 . doi : 10.1016/j.yjmcc.2013.01.011 . PMC 3628281. PMID 23369697 .  
  24. 1 2 Sham, JSK; et al. (1998). "Terminación de la liberación de Ca2+ por una inactivación local de los receptores de rianodina en miocitos cardíacos" . Proc. Natl. Acad. Sci. USA . 95 (25 ) : 15096– 15101. Bibcode : 1998PNAS...9515096S . doi : 10.1073/pnas.95.25.15096 . PMC 24581. PMID 9844021 .   
  25. Sham, JSK; et al. (1998). "Terminación de la liberación de Ca2+ por una inactivación local de los receptores de rianodina en miocitos cardíacos" . Proc. Natl. Acad. Sci. USA . 95 (25 ) : 15096– 15101. Bibcode : 1998PNAS...9515096S . doi : 10.1073/pnas.95.25.15096 . PMC 24581. PMID 9844021 .   
  26. Sobie, Eric A.; Dilly, Keith W.; dos Santos Cruz, Jader; Lederer, W. Jonathan; Saleet Jafri, M. (julio de 2002). "Terminación de chispas de Ca2+ cardíacas: un modelo matemático de investigación de la liberación de calcio inducida por calcio" . Biophysical Journal . 83 (1): 59– 78. Bibcode : 2002BpJ....83...59S . doi : 10.1016/ S0006-3495 (02)75149-7 . PMC 1302127. PMID 12080100 .  
  27. Asghari, Parisa; Scriven, David RL; Sanatani, Shubhayan; Gandhi, Sanjiv K.; Campbell, Andrew IM; Moore, Edwin DW (2014-07-07). "Disposiciones no uniformes y variables de los receptores de rianodina dentro de los acoplamientos ventriculares de mamíferos" . Circulation Research . 115 (2): 252– 262. doi : 10.1161/CIRCRESAHA.115.303897 . ISSN 0009-7330 . PMID 24786399 .  
  28. Cheng H, Song LS, Shirokova N, et al. (febrero de 1999). "Distribución de amplitud de chispas de Ca 2+ en imágenes confocales: teoría y estudios con un método de detección automática " . Biophysical Journal . 76 (2): 606– 17. doi : 10.1016/S0006-3495(99)77229-2 . PMC 1300067. PMID 9929467 .   
  29. Sebille S, Cantereau A, Vandebrouck C, et al. (enero de 2005). "Chispas de Ca 2+ en células musculares: procedimientos interactivos para la detección y medición automáticas en series de imágenes confocales de barrido lineal". Computer Methods and Programs in Biomedicine . 77 (1): 57– 70. doi : 10.1016/j.cmpb.2004.06.004 . PMID 15639710 .  

Software

  • SparkMaster - Análisis automatizado de chispas de Ca 2+ con ImageJ - Software gratuito para el análisis de chispas de Ca 2+ en imágenes de barrido lineal confocal