
Los biorreporteros son células microbianas vivas e intactas que han sido modificadas genéticamente para producir una señal medible en respuesta a un agente químico o físico específico en su entorno . Los biorreporteros contienen dos elementos genéticos esenciales: un gen promotor y un gen reportero . El gen promotor se activa ( transcribe ) cuando el agente objetivo está presente en el entorno celular. En una célula bacteriana normal, el gen promotor está vinculado a otros genes que también se transcriben y se traducen en proteínas que ayudan a la célula a combatir o adaptarse al agente al que ha estado expuesta. En el caso de un biorreportero, estos genes, o partes de ellos, se han eliminado y reemplazado por un gen reportero. Como resultado, la activación del gen promotor también activa el gen reportero, lo que conduce a la producción de proteínas reporteras que generan una señal detectable. La presencia de una señal indica que el biorreportero ha detectado un agente específico en su entorno.
Originalmente desarrollados para el análisis fundamental de factores que afectan la expresión génica , los biorreporteros se aplicaron inicialmente para la detección de contaminantes ambientales [ 1 ] y desde entonces han evolucionado hacia campos tan diversos como el diagnóstico médico , la agricultura de precisión , la garantía de seguridad alimentaria , el monitoreo y control de procesos y la computación biomicroelectrónica . Su versatilidad radica en la existencia de un gran número de sistemas de genes reporteros capaces de generar una variedad de señales. Además, los genes reporteros pueden insertarse genéticamente en células bacterianas , de levadura , vegetales y de mamíferos , lo que proporciona una funcionalidad considerable en una amplia gama de vectores hospedadores.
Sistemas de genes reporteros
Existen varios tipos de genes reporteros disponibles para la construcción de organismos biorreporteros, y las señales que generan suelen clasificarse como colorimétricas , fluorescentes , luminiscentes , quimioluminiscentes o electroquímicas . Si bien cada una funciona de manera diferente, su producto final siempre es el mismo: una señal medible proporcional a la concentración del agente químico o físico específico al que se han expuesto. En algunos casos, la señal solo se produce al añadir un sustrato secundario al bioensayo ( luxAB , Luc y aequorina). Para otros biorreporteros, la señal debe activarse mediante una fuente de luz externa (GFP y UMT), y para algunos biorreporteros selectos, la señal es completamente autoinducida, sin necesidad de sustrato exógeno ni activación externa ( luxCDABE ). Las siguientes secciones describen brevemente algunos de los sistemas de genes reporteros disponibles y sus aplicaciones actuales.
Luciferasa bacteriana (Lux)

La luciferasa es el nombre genérico de una enzima que cataliza una reacción de emisión de luz. Las luciferasas se encuentran en bacterias, algas, hongos, medusas, insectos, camarones y calamares, y la luz resultante que producen estos organismos se denomina bioluminiscencia. En las bacterias, los genes responsables de la reacción de emisión de luz (los genes lux ) se han aislado y utilizado ampliamente en la construcción de biorreporteros que emiten una luz azul verdosa con una intensidad máxima a 490 nm. [ 2 ] Existen tres variantes de lux : una que funciona a < 30 °C, otra a < 37 °C y una tercera a < 45 °C. El sistema genético lux consta de cinco genes: luxA , luxB , luxC , luxD y luxE . Dependiendo de la combinación de estos genes, se pueden construir diferentes tipos de biorreporteros bioluminiscentes .
Bioreporteros luxAB
Los biorreporteros luxAB contienen únicamente los genes luxA y luxB , que en conjunto generan la señal luminosa. Sin embargo, para que la reacción de emisión de luz se complete, es necesario suministrar un sustrato a la célula. Normalmente, esto se logra mediante la adición del compuesto químico decanal en algún momento del bioensayo. Se han desarrollado numerosos biorreporteros luxAB en sistemas celulares bacterianos, de levadura, de insectos, de nematodos, de plantas y de mamíferos.
Bioreporteros luxCDABE
En lugar de contener únicamente los genes luxA y luxB , los biorreporteros pueden contener los cinco genes del casete lux , lo que permite un sistema de generación de luz completamente independiente que no requiere la adición de sustrato ni la excitación mediante una fuente de luz externa. Así, en este bioensayo, el biorreportero se expone simplemente a un analito objetivo y se observa un aumento cuantitativo de la bioluminiscencia, a menudo en menos de una hora. Su rapidez y facilidad de uso, junto con la posibilidad de realizar el bioensayo repetidamente en tiempo real y en línea, hacen que los biorreporteros luxCDABE sean extremadamente atractivos. Por consiguiente, se han incorporado a una amplia gama de metodologías de detección, desde la detección de contaminantes ambientales hasta la monitorización en tiempo real de infecciones por patógenos en ratones vivos.
Bioreporteros lux no específicos
Los biorreporteros lux no específicos se utilizan habitualmente para la detección de toxinas químicas. Suelen estar diseñados para bioluminiscer de forma continua. Tras la exposición a una toxina química, la célula muere o su actividad metabólica se ve retardada, lo que provoca una disminución de los niveles de luz bioluminiscente . Su aplicación más conocida es el ensayo Microtox, donde, tras una breve exposición a diversas concentraciones de la muestra, la disminución de la bioluminiscencia puede correlacionarse con los niveles relativos de toxicidad . [ 3 ] [ 4 ]
Luciferasa de luciérnaga (Luc)
La luciferasa de luciérnaga cataliza una reacción que produce luz visible en el rango de 550 a 575 nm. También existe una luciferasa de escarabajo clic que produce luz con un pico cercano a los 595 nm. Ambas luciferasas requieren la adición de un sustrato exógeno (luciferina) para que se produzca la reacción lumínica. Se han desarrollado numerosos biorreporteros basados en luciferasa para la detección de una amplia gama de compuestos inorgánicos y orgánicos de interés ambiental. Sin embargo, las aplicaciones más prometedoras probablemente se basen en la introducción del código genético de la luciferasa de luciérnaga en otras células y tejidos eucariotas. [ 5 ]
diagnósticos médicos
La inserción de los genes luc en una línea celular de carcinoma cervical humano ( HeLa ) demostró que la eliminación de células tumorales podía visualizarse en un ratón vivo mediante un simple escaneo con una cámara CCD , lo que permitió monitorizar rápidamente el tratamiento de quimioterapia en línea y en tiempo real. [ 6 ] En otro ejemplo, los genes luc se insertaron en líneas celulares de cáncer de mama humano para desarrollar un bioensayo para la detección y medición de sustancias con potencial actividad estrogénica y antiestrogénica. [ 7 ]
Investigación sobre la regulación genética
Se pueden colocar promotores específicos corriente arriba del gen luc , es decir, la secuencia luc se puede fusionar a la secuencia promotora a nivel de ADN. Si dicha construcción no es demasiado grande, se puede introducir fácilmente en células eucariotas mediante plásmidos . Este método se utiliza ampliamente para estudiar la actividad de un promotor determinado en un tipo celular o tisular específico, ya que la cantidad de luz producida por la luciferasa es directamente proporcional a la actividad del promotor. [ 8 ] Además de estudiar los promotores, los ensayos de luciferasa de luciérnaga ofrecen la opción de estudiar activadores transcripcionales : en estos experimentos, normalmente se utiliza el sistema GAL4/UAS y su secuencia de ADN activadora corriente arriba (UAS) de Gal4 se coloca corriente arriba del gen luc , mientras que los diferentes activadores o las diferentes variantes/fragmentos del mismo activador se fusionan al módulo de unión al ADN de GAL4 a nivel proteico. De esta forma, se puede comparar directamente la actividad transcripcional de las diferentes proteínas de fusión GAL4 utilizando la luz como indicador. [ 9 ]
Aequorina
La aequorina es una fotoproteína aislada de la medusa bioluminiscente Aequorea victoria . Tras la adición de iones de calcio (Ca2+) y coelenterazina, se produce una reacción que genera luz azul en el rango de 460 a 470 nm. La aequorina se ha incorporado a líneas celulares B humanas para la detección de bacterias y virus patógenos en lo que se conoce como el ensayo Cell CANARY (Análisis Celular y Notificación de Riesgos y Rendimientos de Antígenos). [ 10 ] Las células B se modifican genéticamente para producir aequorina. Tras la exposición a antígenos de diferentes patógenos, las células B recombinantes emiten luz como resultado de la activación de una cascada de señalización intracelular que libera iones de calcio dentro de la célula.
Proteína fluorescente verde (GFP)
La proteína verde fluorescente (GFP) es una fotoproteína aislada y clonada de la medusa Aequorea victoria . [ 11 ] También se han aislado variantes del pez Renilla reniformis . La GFP, al igual que la aequorina, produce una señal fluorescente azul, pero sin la necesidad de añadir un sustrato exógeno. Basta con una fuente de luz ultravioleta para activar las propiedades fluorescentes de la fotoproteína. Esta capacidad de autofluorescencia hace que la GFP sea muy útil en ensayos de biodetección, ya que puede utilizarse en línea para monitorizar células vivas intactas. Además, la posibilidad de modificar la GFP para que produzca emisiones de luz distintas del azul (es decir, cian, rojo y amarillo) permite su uso como detector de múltiples analitos. Por consiguiente, la GFP se ha utilizado ampliamente en construcciones de biorreporteros en huéspedes bacterianos, de levadura, nematodos, plantas y mamíferos.
Uroporfirinógeno (urógeno) III metiltransferasa (UMT)
La uroporfirinógeno (urógeno) III metiltransferasa (UMT) cataliza una reacción que produce dos productos fluorescentes que generan una fluorescencia rojo-anaranjada en el rango de 590 a 770 nm cuando se iluminan con luz ultravioleta . [ 12 ] Por lo tanto, al igual que con la GFP, no se requiere la adición de sustratos exógenos. La UMT se ha utilizado como biorreportero para la selección de plásmidos recombinantes , como marcador de la transcripción génica en células bacterianas, de levadura y de mamíferos, y para la detección de sales tóxicas como el arsenito y el antimonio .
Referencias
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- ↑ Meighen, EA (1994) Genética de la bioluminiscencia bacteriana. Annu. Rev. Genet. 28, 117-139. http://arjournals.annualreviews.org/doi/abs/10.1146/annurev.ge.28.120194.001001
- ↑ "Agua Moderna | Tecnologías Hídricas Líderes Mundiales" . Archivado del original el 21/01/2013.
- ↑ Hermens, J. et al. (1985) Relaciones cuantitativas estructura-actividad y toxicidad de mezclas de compuestos orgánicos en Photobacterium phosphoreum: la prueba Microtox. Ecotoxicol. Environ. Saf. 9, 17-25. https://doi.org/10.1007%2Fs11434-006-2168-z
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- ↑ Kovács KA, Steinmann M, Halfon O, Magistretti PJ, Cardinaux JR (noviembre de 2015). "Regulación compleja de la proteína de unión a CREB por la proteína quinasa 2 que interactúa con el homeodominio" (PDF) . Cellular Signalling . 27 (11): 2252–60 . doi : 10.1016/j.cellsig.2015.08.001 . PMID 26247811. Archivado del original (PDF) el 21 de julio de 2018. Recuperado el 8 de julio de 2019 .
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