La microscopía de fuerza fluida ( FluidFM ) es un tipo de microscopía de sonda de barrido y se utiliza normalmente en un microscopio óptico invertido estándar .
La característica distintiva de FluidFM es la introducción de canales microscópicos en las sondas de AFM . Estos canales pueden tener una apertura inferior a 300 nm, es decir, 500 veces más delgados que un cabello humano . Esta característica nanométrica permite manipular volúmenes de líquido a escala de femtolitros (fL), así como realizar manipulaciones controladas por fuerza de objetos submicrométricos. Mediante los canales nanofluídicos, se pueden, por ejemplo, introducir sustancias en células individuales o aislar células de una capa confluente.
Tecnología
Las micropipetas y nanopipetas especiales se utilizan como sondas FluidFM con aberturas entre 300 nm y 8 μm. Un diámetro mayor resulta útil para experimentos de adhesión de células individuales, mientras que un diámetro menor ofrece buenas oportunidades para la nanolitografía y la manipulación de objetos submicrométricos. En comparación con las micropipetas de vidrio tradicionales , las sondas FluidFM son mucho más delicadas con muestras blandas como las células. Se pueden controlar con precisión de pN y nm, y manejan volúmenes de forma más precisa y consistente gracias a su proceso de fabricación basado en obleas. FluidFM presenta ventajas únicas para aplicaciones de células individuales y más allá.
Para controlar volúmenes en el rango de fL, FluidFM se basa en el control de presión. Se utiliza sobrepresión o vacío, según la aplicación. Las presiones de funcionamiento típicas se encuentran en el rango de unos pocos hPa .
La tecnología FluidFM se suele utilizar sobre un microscopio invertido. Además de los experimentos estándar de AFM , FluidFM ofrece la posibilidad de realizar un sinfín de aplicaciones, como la inyección y adhesión de células individuales, así como la nanolitografía y la deposición de muestras.
Aplicaciones
La inyección en células individuales es una herramienta importante para las ciencias de la vida, la biología y la medicina. Para realizar experimentos de inyección en células individuales, la sonda perfora la célula y se puede inyectar una sustancia. Con FluidFM, la tasa de éxito es casi del 100%, a diferencia de otros métodos, porque las sondas son pequeñas, afiladas y sensibles a la fuerza. [ 1 ] [ 2 ]
Se puede aislar una sola célula a partir de un cultivo celular adherente, incluso confluente , o de una suspensión celular. La célula aislada se puede analizar mediante métodos establecidos para células individuales o utilizarse para cultivar una nueva colonia. FluidFM se ha utilizado para aislar células de mamíferos , levaduras y bacterias . [ 3 ] [ 4 ] [ 5 ]
Al medir la adhesión de células individuales, se puede obtener información importante para diversos temas en biología y ciencia de los materiales. Con FluidFM es posible aumentar la velocidad de realización de estos experimentos e incluso evaluar la adhesión de células extendidas. La célula de interés se adhiere reversiblemente a la sonda mediante la aplicación de una presión negativa. Al elevar la sonda, se puede medir la fuerza de adhesión con una resolución de pN. [ 6 ] [ 7 ] [ 8 ]
El método para realizar un experimento de adhesión de bacterias individuales es el mismo que para células individuales. Proporciona información sobre cómo las células bacterianas interactúan con su superficie y entre sí. [ 9 ]
Los experimentos con coloides permiten medir las fuerzas de interacción entre partículas coloidales y superficies, así como la elasticidad local de sustratos complejos . La frecuencia de estos experimentos es bastante baja, ya que normalmente los coloides deben adherirse previamente a una sonda de AFM. En cambio, las sondas de coloides pueden fijarse reversiblemente a la sonda FluidFM mediante presión negativa. Por lo tanto, una sola sonda puede utilizarse para numerosos experimentos y con diversos coloides. [ 8 ] [ 10 ]
La nanolitografía es el proceso de grabado, escritura o impresión de estructuras en el rango de los nanómetros. Se pueden dispensar pequeñas cantidades de fluidos a través de la punta de una sonda. Con FluidFM, los volúmenes dispensados van desde sub fL hasta varios pL. FluidFM funciona tanto en aire como en líquido. [ 11 ] [ 12 ]
El proceso de impresión consiste en crear puntos y matrices de alta densidad en el rango de nanómetros a micrómetros. Es posible imprimir prácticamente cualquier líquido. Las partículas impresas pueden ser, por ejemplo, oligonucleótidos, proteínas, ADN, viriones o clones bacterianos. Los puntos se crean cuando la nanopipeta entra en contacto con la superficie y la sustancia se libera de la sonda mediante un breve pulso de presión. [ 12 ] [ 13 ]
Referencias
- ^ 2013. O. Guillaume - Gentil, E. Potthoff, D. Ossola, P. Dörig, T. Zambelli y JA Vorholt. Inyección de fluidos controlada por fuerza en núcleos unicelulares. Pequeño, 9 (11), 1904 – 1907. doi : 10.1002/smll.201202276
- ↑ 2009. A. Meister, M. Gabi, P. Behr, P. Studer, J. Vörös, P. Niedermann, J. Bitterli, J. Polesel-Maris, M. Liley, H. Heinzelmann y T. Zambelli. FluidFM: Combinación de microscopía de fuerza atómica y nanofluídica en un sistema universal de suministro de líquidos para aplicaciones en células individuales y más allá. Nano Letters, 9 (6), 2501-2507. doi : 10.1021/nl901384x
- ↑ 2014 O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli y JA Vorholt. Aislamiento de células individuales de mamíferos a partir de cultivos adherentes mediante microscopía de fuerza fluida. Lab on a chip, 14(2), 402–14. doi : 10.1039/c3lc51174j
- ↑ 2010. P. Dörig, P. Stiefel, P. Behr, E. Sarajlic, D. Bijl, M. Gabi, J. Vörös, JA Vorholt y T. Zambelli. Manipulación espacial controlada por fuerza de células de mamíferos viables y microorganismos mediante la tecnología FluidFM. Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1–3. doi : 10.1063/1.3462979
- ↑ 2013. P. Stiefel, T. Zambelli y JA Vorholt. Aislamiento de bacterias individuales detectadas ópticamente mediante la aplicación de microscopía de fuerza fluida a fotótrofos anoxigénicos aerobios de la filosfera. Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895–4905. doi : 10.1128/AEM.01087-13
- ^ 2014. E. Potthoff, D. Franco, V. D'Alessandro, C. Starck, V. Falk, T. Zambelli, JA Vorholt, D. Poulikakos y A. Ferrari. Hacia un diseño racional de texturas superficiales que promuevan la endotelización. Nano letras, 14 (2), 1069 – 1079. doi : 10.1021/nl4047398
- ↑ 2012. E. Potthoff, O. Guillaume-Gentil, D. Ossola, J. Polesel-Maris, S. LeibundGut-Landmann, T. Zambelli y J.A. Vorholt. Cuantificación rápida y seriada de las fuerzas de adhesión de células de levadura y mamíferos. PLoS ONE, 7 (12), e52712. doi : 10.1371/journal.pone.0052712
- 1 2 2013. P. Dörig, D. Ossola, AM Truong, M. Graf, F. Stauffer, J. Vörös y T. Zambelli. Sondas coloidales intercambiables para AFM para la cuantificación de interacciones irreversibles y a largo plazo. Biophysical Journal, 105 (2), 463 – 472. doi : 10.1016/j.bpj.2013.06.002
- ↑ 2015. E. Potthoff, D. Ossola, T. Zambelli y JA Vorholt. Cuantificación de la fuerza de adhesión bacteriana mediante microscopía de fuerza fluida. (2015) Nanoscale, 7 (9), 4070 – 4079. doi : 10.1039/c4nr06495j
- ↑ 2015. BR Simona, L. Hirt, L. Demkó, T. Zambelli, J. Vörös, M. Ehrbar y V. Milleret. Gradientes de densidad en interfaces de hidrogel para una mayor penetración celular. Biomater. Sci. doi : 10.1039/C4BM00416G
- ↑ 2013. RR Grüter, J. Vörös y T. Zambelli. FluidFM como herramienta de litografía en líquido: deposición espacialmente controlada de nanopartículas fluorescentes. Nanoscale, 5 (3), 1097 – 104. doi : 10.1039/c2nr33214k
- 1 2 2014. H. Dermutz, RR Grüter, AM Truong, L. Demkó, J. Vörös y T. Zambelli. Sustitución local de polímeros para la formación de patrones neuronales y la guía in situ de neuritas. Langmuir: the ACS journal of surfaces and colloids, 30 (23), 7037 – 46. doi : 10.1021/la5012692
- ↑ 2009. A. Meister, J. Polesel-Maris, P. Niedermann, J. Przybylska, P. Studer, M. Gabi, P. Behr, T. Zambelli, M. Liley, J. Vörös y H. Heinzelmann. Dispensación a nanoescala en un entorno líquido de estreptavidina sobre una superficie funcionalizada con biotina mediante sondas huecas de microscopía de fuerza atómica. Microelectronic Engineering, 86(4-6), 1481-1484. doi : 10.1016/j.mee.2008.10.025
- Microscopía
- Optofluídica